CONDIZIONI CONTRATTUALI E NOTE INFORMATIVE PER IL CLIENTE

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

CONDIZIONI CONTRATTUALI E NOTE INFORMATIVE PER IL CLIENTE

Di seguito vengono riportate le condizioni contrattuali ed alcune informazioni che il cliente deve conoscere e di cui è pregato di prendere atto. Una copia del presente documento viene rilasciata al momento della stipula del contratto.


LABORATORIO DI SANITA' PUBBLICA – AREA VASTA TOSCANA SUD-EST

Attraverso vari passaggi istituzionali, di cui i principali sono la L.R. 81/2012, la Delibera R.T. N. 1235 del 28-12-2012, la Delibera R.T. N. 671 del 04-08-2014, la Delibera R.T. N. 757 del 10-07-2017, la Regione Toscana ha istituito il Dipartimento Interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanità Pubblica (DIRLSP), ridistribuendo le funzioni analitiche e allargando l'utenza istituzionale ad altri soggetti oltre che ai Dipartimenti di Prevenzione; l'utenza istituzionale è rappresentata da tutte le strutture (Dipartimenti di Prevenzione, Servizi di Prevenzione e Protezione, reparti ospedalieri, Direzioni Sanitarie ecc.) delle Aziende USL della Toscana.

Il DIRLSP è costituito da 3 laboratori, collocati presso le Aziende USL di Firenze, Siena e Lucca, i quali svolgono funzioni analitiche diverse.

Le condizioni e le informazioni di seguito riportate si riferiscono esclusivamente al Laboratorio di Sanità Pubblica di Siena (LSP).


CHI E COME SI PUO' ACCEDERE ALLE PRESTAZIONI DEL LABORATORIO DI SANITA' PUBBLICA

Al LSP, oltre a tutte le strutture delle Aziende USL della Regione Toscana (che vi accedono gratuitamente), possono rivolgersi a pagamento tutti i cittadini, le aziende e gli Enti Pubblici o Privati della Toscana o altra regione italiana. Il pagamento deve essere effettuato al momento della consegna dei campioni e comunque prima dell'invio dei rapporti di prova da parte del Laboratorio.

I cittadini o gli Enti che intendono far pervenire al LSP di Siena campioni da analizzare devono consegnare i reperti nei giorni e nelle ore di accettazione campioni, accompagnando i suddetti con una richiesta scritta dove siano presenti il nome, l'indirizzo e il numero di telefono del richiedente, gli estremi per la fatturazione, la tipologia di campione e le analisi richieste, l'indirizzo (anche indirizzo mail) dove inviare i rapporti di prova, qualora questi non vengano ritirati direttamente dall'interessato. I campioni di sangue e urina destinati all'analisi devono essere, se necessario, aliquotati e accompagnati anche da una richiesta firmata da un medico. Qualora sia necessaria l'aliquotazione (richiesta di più analisi sullo stesso campione) i campioni non aliquotati non verranno accettati. Solo nel caso di campioni provenienti da procedimenti giudiziari o da campionamenti ufficiali, il LSP si riserva, qualora sia possibile, il compito di aliquotare i campioni.

Qualora la richiesta di esami su sangue o urina sia stata effettuata dal medico curante è dovuto il pagamento del solo ticket da effettuare prima del ritiro del rapporto di prova. E' possibile delegare altra persona al ritiro dei rapporti di prova, nel qual caso il ritirante deve mostrare copia della ricevuta di accettazione – contratto e regolare delega con firma e fotocopia di un documento identificativo del cliente.


ORARIO DI ACCETTAZIONE DEI CAMPIONI

Dal lunedì al venerdì dalle ore 9,00 alle ore 13,00.

Venerdì pomeriggio dalle ore 14,00 alle ore 19,00 previo appuntamento telefonico (0577 536752).


CONTRATTO

Il contratto viene stipulato con il Cliente al momento del conferimento del/i campione/i da analizzare ed è materialmente costituito dalla ricevuta di accettazione rilasciata al cliente in copia e dal presente allegato.

Il contratto viene attivato da una richiesta di analisi su carta intestata o su carta semplice, con riportati gli estremi del cliente comprensivi dell’indirizzo e recapito telefonico e, se necessario, i dati relativi alla fatturazione. I vari moduli per le richieste di analisi sono inseriti nel sito web del laboratorio (xxxx://xxx.xxxxxxxxx.xxxxxxx.xx/xxxxx.xxx/xxxxxxxxxxx- sanita-pubblica) a disposizione dei clienti.

In alcuni casi particolari, quali ad esempio la mancanza della richiesta di un medico per i campioni biologici (sangue e urina), richiesta incompleta, campioni recapitati da persona non abilitata alla firma del contratto (persona diversa dal contraente o comunque da chi ha titolo per la firma del

contratto) ecc., i campioni possono essere accettati con riserva, nel qual caso il cliente dovrà perfezionare il contratto di norma entro 48 ore lavorative (salvo altri accordi presi al momento dell'accettazione), pena la decadenza dello stesso e la mancata analisi dei campioni. Nel caso di campioni arrivati per posta o tramite corrieri il LSP, entro 48 ore lavorative, provvederà a contattare il cliente per il perfezionamento del contratto.

I termini contrattuali massimi per l'emissione dei rapporti di prova in ambito chimico sono di norma di 45 giorni dalla data di accettazione. Qualora tali termini non possano essere rispettati, il cliente è informato se possibile al momento dell'accettazione del campione (nel qual caso i termini di emissione saranno riportati nel contratto – ricevuta di accettazione) o comunque al momento che si rende evidente l'impossibilità di rispettare il termine di 45 giorni.

Per la determinazione del Radon i risultati della valutazione sono disponibili di norma entro 15 giorni dal ricevimento dei dosimetri e comunque non oltre 30 giorni dal ricevimento degli stessi.


TIPOLOGIE DI CLIENTI E TARIFFE PRATICATE DAL LSP DI SIENA

Le strutture delle Aziende USL della Toscana accedono gratuitamente alle prestazioni del Laboratorio, per gli altri soggetti la tariffa praticata per le prove analitiche dal LSP di Siena è quella prevista dal Tariffario deliberato dalla Xxxxxxx Xxxxxxx (Xxxxxxxxxxxxx x. 000 del 2 Maggio 2022) e recepito dall'Azienda USL Toscana Sud Est con propria deliberazione (Deliberazione del Direttore Generale N. 780 del 09-06-2022). Qualora la prova richiesta non sia riportata sul tariffario la tariffazione delle prove mancanti avviene per similitudine ovvero viene applicata la tariffa prevista per analisi simili.

Il Tariffario della Regione Toscana è soggetto a revisione in base all'aggiornamento annuale dei prezzi al consumo effettuato dall'ISTAT nonché in base a qualsiasi altra motivazione, il cliente è comunque tenuto a pagare la tariffa in vigore al momento dell’accettazione del/i campione/i.

Il cliente che richiede l'analisi di molti campioni può richiedere l'applicazione di una tariffa ridotta rispetto al Tariffario, il Laboratorio, sentita la Direzione Aziendale, si riserva in maniera unilaterale di accettare o meno la richiesta.


IDENTIFICAZIONE DELLE PROVE DI ANALISI E TARIFFARIO

Al fine di semplificare le operazioni di accettazione (consegna dei campioni e rilascio della ricevuta di accettazione – contratto) gli analiti non vengono di norma indicati con il metodo di prova ma semplicemente con il nome/i dell'analita/i o tramite una sigla. Ad ogni analita associato ad una singola matrice corrisponde però un metodo di prova univoco di seguito identificato correttamente, il cliente è pertanto pregato di consultare l'elenco riportato di seguito nel presente documento, tenendo conto del fatto che la firma sul contratto (annuale o estemporaneo) rappresenta accettazione contrattuale del metodo/i analitico/i utilizzato/i nel LSP di Siena. Nel citato elenco viene riportato anche il Tariffario praticato dal LSP (Tariffario della Regione Toscana).


ACCREDITAMENTO ACCREDIA

Il LSP di Siena è accreditato ACCREDIA (Ente Italiano di Accreditamento) (n° di accreditamento 0790 L) secondo la norma UNI CEI EN ISO/IEC 17025/2018. Nella tabella "Analiti, Metodi di Prova e Tariffario" contenuta nel presente documento, i metodi di prova accreditati sono scritti in grassetto e recano accanto all'identificativo della prova e al nome dell'analita corrispondente il simbolo 🙪 Se in uno stesso metodo di prova sono presenti analiti accreditati ed altri non accreditati il simbolo 🙪 viene posto solamente accanto agli analiti accreditati che sono anche evidenziati in grassetto mentre quelli non accreditati non lo sono.

Volendo informare il cliente sul significato dell'accreditamento ACCREDIA di seguito si riportano alcuni stralci ripresi integralmente dal sito web di ACCREDIA (xxxx://xxx.xxxxxxxx.xx):

..................

ACCREDIA è l'Ente designato dal governo italiano ad attestare la competenza, l'indipendenza e l'imparzialità degli organismi e dei laboratori che verificano la conformità dei beni e dei servizi alle norme.

Le attività dell'Ente si articolano in tre Dipartimenti:

- Certificazione e ispezione;

- Laboratori di prova;

- Laboratori di taratura.

Quale authority super partes, l'Ente di accreditamento garantisce l’affidabilità dei servizi svolti dagli organismi e dai laboratori, e svolge un servizio di pubblico interesse.

In qualità di terza parte indipendente, ACCREDIA garantisce il rispetto delle norme da parte degli organismi e dei laboratori accreditati e l’affidabilità delle attestazioni di conformità da essi rilasciate sul mercato, svolgendo un servizio a tutela della salute e della sicurezza delle persone e dell’ambiente.

Il ricorso da parte delle istituzioni, delle imprese e dei consumatori ai servizi di valutazione della conformità quali certificazioni, ispezioni, verifiche, prove e tarature accreditate, contribuisce ad alimentare la fiducia che sul mercato circolino beni e servizi sicuri e di qualità.

Nel caso dei laboratori, l’accreditamento dimostra che il soggetto soddisfa sia i requisiti tecnici che quelli relativi al sistema di gestione, necessari per offrire dati e risultati accurati e tecnicamente validi per specifiche attività di prova, di analisi e di taratura.

..................

ACCREDIA, mediante i propri funzionari tecnici, gli ispettori e gli esperti impegnati nelle attività di verifica, opera nel rispetto dei principi indicati dalla norma internazionale ISO/IEC 17011 e dal Regolamento CE 765/2008.

La politica della qualità e per l'imparzialità di ACCREDIA è volta a tutelare e assicurare la soddisfazione di tutte le parti interessate alle attività di accreditamento e valutazione della conformità.

L’accreditamento assicura che gli organismi di certificazione, ispezione e verifica, e i laboratori di prova e taratura, abbiano tutti i requisiti richiesti dalle norme per svolgere attività di valutazione della conformità.

Le verifiche per accreditare gli organismi e i laboratori sono svolte da ACCREDIA in base ad alcuni principi fondamentali che conferiscono valore ai servizi accreditati:

- Competenza. ACCREDIA valuta l’esperienza e la preparazione tecnica e professionale del personale dell’organismo o del laboratorio in funzione degli specifici settori operativi.

- Imparzialità e indipendenza. ACCREDIA accerta l’effettiva terzietà in particolare degli organismi di certificazione e ispezione, a garanzia dell’obiettività e dell’equità delle loro valutazioni.

- Riservatezza. Gli organismi e i laboratori non possono divulgare alcuna informazione riservata ottenuta durante il processo di valutazione della conformità.

- Assenza di conflitti di interessi. Il personale dell’organismo e del laboratorio deve dimostrare l’assenza di conflitti d’interesse rispetto al fornitore del prodotto da testare o dello strumento da tarare.

- Responsabilità. Gli organismi e i laboratori sono responsabili della valutazione delle evidenze oggettive su cui basano le proprie decisioni circa la conformità dell’organizzazione o del prodotto testato e devono gestire in modo rapido e accurato i reclami provenienti dai clienti e dal mercato.

Gli organismi e i laboratori accreditati utilizzano il marchio ACCREDIA per dimostrare il riconoscimento formale della propria competenza, indipendenza e imparzialità da parte dell’Ente nazionale di accreditamento.

..................

Il logo ACCREDIA, riconoscibile sui certificati rilasciati dall’Ente agli organismi e ai laboratori che ottengono l’accreditamento, rappresenta il “marchio di accreditamento”.

Gli organismi e i laboratori accreditati possono applicare un’apposita versione del marchio ACCREDIA sui certificati di conformità e di taratura,

sulle dichiarazioni di verifica e sui rapporti di prova e di ispezione, per testimoniare il riconoscimento ufficiale, a livello nazionale e internazionale, della loro idoneità a svolgere la specifica attività di valutazione della conformità per cui hanno ottenuto l’accreditamento.

Le imprese, le organizzazioni pubbliche e i professionisti che ricorrono ai servizi di certificazione, ispezione e verifica hanno a loro volta la facoltà di esibire il marchio ACCREDIA in qualità di utenti e clienti degli organismi accreditati.

La corretta diffusione del marchio di accreditamento è fondamentale per valorizzare l’attività di valutazione della conformità degli organismi e dei laboratori accreditati, e per promuovere l’affidabilità delle certificazioni, delle ispezioni, delle verifiche, delle prove e delle tarature.

..................

INCERTEZZA DI MISURA

Per le prove accreditate è prevista l’espressione dell’incertezza di misura (incertezza estesa al 95%, fattore di copertura K=2) coerentemente con l’unità di misura del valore riportato, stimata dai dati di validazione dei metodi di prova. Nelle prove accreditate l'incertezza viene riportata sul rapporto di prova quando l’entità della stessa possa invalidare il risultato o il confronto con il Valore Limite. In tutti casi, anche per le prove non accreditate, l'incertezza viene riportata anche qualora lo richieda (anche verbalmente) il cliente.


CONSERVAZIONE DEI CAMPIONI ANALIZZATI

I campioni sottoposti a prova, di norma dopo l'emissione del rapporto di prova vengono considerati rifiuti e come tali conferiti per lo smaltimento. Solo in caso di espressa richiesta del cliente il LSP può conservare i campioni o i sottocampioni fino a tempi conformi alla conosciuta conservabilità. In tal caso, qualora per la conservazione del campione sia necessaria e possibile l’aliquotazione (matrice che permetta l'aliquotazione, quantità di campione che permetta una aliquotazione, matrice che possa essere conservata e di cui è conosciuto il tempo di conservazione ecc.) il LSP esegue l’aliquotazione conservando i sottocampioni fino ai tempi richiesti dal cliente, conformemente alla conosciuta conservabilità.


CONSERVAZIONE DELLA DOCUMENTAZIONE

Tutta la documentazione inerente le prove di analisi effettuate dal LSP e le altre documentazioni di seguito elencate vengono conservate 5 anni e in particolare: Rapporti di prova, Fogli di lavoro, Rapporti di taratura (almeno gli ultimi due), Certificati di taratura (almeno gli ultimi due), Controlli dello stato di taratura, Registrazioni ambientali, Verbali di campionamento, Registrazioni strumentali, Contratti e loro riesami.


IMPEGNO ALLA RISERVATEZZA

Ai sensi del Regolamento (UE) 2016/679, tutti i dati riservati relativi ai Clienti non sono divulgati. Fanno eccezione le informazioni che debbano essere consegnate da parte del Laboratorio ad Autorità giudiziaria o amministrativa sulla base di Norme e Leggi in vigore. Il Laboratorio si impegna:

1. a considerare le informazioni confidenziali e riservate come strettamente private e ad adottare tutte le ragionevoli misure finalizzate a mantenerle tali;

2. ad utilizzare le informazioni confidenziali e riservate unicamente allo scopo per le quali sono state fornite o rese note, impegnandosi a non divulgarle a soggetti terzi;

3. a non usare tali informazioni in modo da poter arrecare qualsivoglia tipo di danno ai soggetti coinvolti;

4. a garantire la massima riservatezza, anche in osservanza alla vigente normativa in materia di marchi, di copyright e di brevetti per invenzioni industriali e in base alla normativa sulla privacy, ai sensi del D.Lgs. 196/2003, riguardo il know-how e tutte le informazioni acquisite, che non potranno in alcun modo, in alcun caso e per alcuna ragione essere utilizzate a proprio o altrui profitto e/o essere divulgate e/o riprodotte o comunque rese note

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a soggetti terzi.

Gli impegni assunti non si applicano alle informazioni, o a parte delle stesse, che nel momento in cui vengono rese note, direttamente o indirettamente, siano già di pubblico dominio”.


COMUNICAZIONI AI CLIENTI SU DICHIARAZIONI DI CONFORMITA' E REGOLE DECISIONALI

Il Laboratorio non esprime usualmente dichiarazioni di conformità ma fornisce al cliente l’incertezza di misura quando necessaria per valutare la conformità a un valore limite (VL) normato a livello nazionale. Se tuttavia il cliente richiede una dichiarazione di conformità, la norma di riferimento è definita dal LSP in base all'inquinante/analita determinato e inserita nel rapporto di prova.

La regola decisionale adottata prende in considerazione solo valori massimi accettabili (VL) e il confronto viene eseguito su una sola coda della distribuzione. La regola decisionale si applica per valori puntuali e non per serie di dati.

Quando le norme di riferimento non indicano le regole decisionali, per l’analisi di conformità richieste dal Cliente il LSP considera il Risultato della misura (R) non conforme quando maggiore del VL con una probabilità superiore al 97,5%. In altre parole il campione è non conforme quando il risultato della misura R supera il VL oltre ogni ragionevole dubbio, cioè tenendo conto dell’incertezza di misura estesa (U), stimata ad un livello di confidenza del 97,5%. Il rischio specifico è quindi inferiore al 2,5% per la probabilità di falsa accettazione (PFA) e per la probabilità di falso rifiuto (PFR).

Si possono quindi verificare quattro diverse situazioni:

• caso 1: R<VL e tutto l'intervallo R±U <VL situazione di conformità al VL;

• caso 2: R<VL ma R+U >VL situazione di conformità al VL;

• caso 3: R>VL ma R-U <VL Il Laboratorio esprime conformità al VL segnalando comunque in nota sul rapporto di prova una situazione di criticità;

• caso 4: tutto l'intervallo R±U >VL situazione di non conformità al VL.

Per le analisi chimiche e per il Radon le norme di riferimento che riportano

VL cogenti a livello nazionale sono indicate di seguito:

• piombo ematico: XX xxxxxxxxx xxxxxxxx XXXXX X.Xxx. 00/0000;

• inquinanti aerodispersi per i quali il D.Lgs. 81/2008 riporta un valore limite di esposizione professionale (allegati XXXIX e XLIII): rifacendosi alle norme tecniche di riferimento dello stesso decreto ed in particolare alla UNI EN ISO 689:2019, la valutazione di conformità non può essere eseguita sulla base di una singola misura a meno che questa non superi il Valore limite. In quest'ultimo caso il superamento del valore limite viene valutato su richiesta del Cliente in base alla regola decisionale dichiarata. Negli altri casi è il dettato della norma che definisce i criteri per stabilire la “compliance” al valore limite;

• amianto aerodisperso determinato in base al Capo III del Titolo IX del D.Lgs. 81/2008: il valore limite di esposizione è fissato a 0,1 fibre per centimetro cubo di aria (art. 254);

• amianto aerodisperso, determinato in SEM per la restituibilità di ambienti dopo bonifica secondo il DM 06/09/1994 GU n° 288 del 10/12/1994 All. 2 Met B: limite normativo 2 fibre/L;

• Radon: Decreto Legislativo 31 luglio 2020, n.101 che definisce i

livelli massimi della concentrazione media annua per i luoghi di lavoro e le abitazioni (vedi in questo stesso documento la parte dedicata a l l e ” INFORMAZIONI GENERALI SUL CAMPIONAMENTO ESEGUITO DAL CLIENTE”).

Per l'amianto in acqua determinato con metodo ISS.EAA.000:2015 e per tutti gli altri analiti determinati in matrici ambientali e biologiche che non sottostanno a limiti cogenti derivanti da normativa nazionale, il LSP non riporta nel rapporto di prova l'incertezza di misura a meno che non espressamente richiesta dal Cliente.

Per le analisi microbiologiche, il LSP non associa l’incertezza di misura ai risultati quantitativi delle prove e non esprime giudizi di conformità (a meno che non espressamente richiesto dal Cliente). La valutazione viene normalmente eseguita dal Cliente in base a parametri da esso stesso stabiliti (andamento storico dei dati, livello di rischio definito sulla base del reparto

nel quale è stata eseguita la misura, percentuale di campioni positivi sul

totale, etc.), anche tenendo conto di pubblicazioni scientifiche, documenti di indirizzo e linee guida stabiliti da INAIL, ISS etc. alcuni dei quali sono riportati in questo stesso documento nella parte dedicata alle ”INFORMAZIONI GENERALI SUL CAMPIONAMENTO ESEGUITO DAL CLIENTE”.

Qualora il cliente dovesse richiedere dichiarazioni di conformità in relazione a norme e/o con regole decisionali diverse da quelle descritte sopra, gli scostamenti richiesti non devono impattare sull’integrità del LSP o sulla validità dei risultati; la richiesta sarà quindi esaminata alla luce dei criteri generali descritti nel Macro-Processo 06 “Progettazione, verifica e validazione, analisi delle prestazioni dei metodi di prova”. Nella fattispecie si renderà necessario:

• valutare se la richiesta rientri nelle competenze istituzionali del LSP;

• identificare chiaramente quali esigenze occorre soddisfare;

• identificare il contesto normativo nazionale ed internazionale di riferimento;

• definire di concerto con il cliente le regole decisionali per la dichiarazione di conformità in esame, esplicitando che quando la regola decisionale è dettata dal cliente, da regolamenti, documenti o normative, non sono necessarie ulteriori considerazioni sul livello di rischio;

• ogni eventuale differenza tra la richiesta o l’offerta e il contratto deve essere risolta con il Cliente prima dell’avvio delle attività di Laboratorio.

In ogni caso, se richiesta dal Cliente, la dichiarazione di conformità viene riportata nel campo “Eventuali note” del rapporto di prova, prima della firma del Responsabile di Xxxxxxx.


INFORMAZIONI AGGIUNTIVE SUI RAPPORTI DI PROVA E LA LORO RIEMISSIONE

In riferimento al Regolamento per l'utilizzo del marchio ACCREDIA (RG- 09 scaricabile all'indirizzo xxxxx://xxx.xxxxxxxx.xx/xxxxxxxxx/xx-00-xxx-

11-regolamento-per-lutilizzo-del-marchio-accredia/ e disponibile presso il

LSP), nell'ottica del principio di trasparenza, i rapporti di prova relativi ad analiti determinati con metodi di prova accreditati vengono emessi con marchio ACCREDIA a meno che non sia stato esplicitamente concordato in modo documentato con il cliente l'emissione del rapporto di prova senza marchio. Ne consegue che, qualora un rapporto di prova non possa essere emesso con marchio perché non rispettate le condizioni previste dalle norme di riferimento o dalle condizioni di accreditamento, il rapporto di prova viene emesso senza marchio previa informazione e accettazione da parte del Cliente. In caso di non utilizzo del marchio ACCREDIA, i rapporti di prova non sono coperti da accreditamento e non possono essere forniti a terzi (Rif. XX 00 Xxxxxxxx).


I rapporti di prova possono essere modificati solo in caso di errori introdotti dal Laboratorio, mentre non sono eseguibili modifiche a seguito di richieste da parte del cliente. I rapporti di prova vengono riemessi o corretti in caso di utilizzo scorretto del Marchio ACCREDIA o del riferimento all'accreditamento, in caso di errori nei risultati di prova, o in caso di ogni altra carenza o errore che possa comportare il cattivo utilizzo da parte del cliente o di una parte terza, o compromettere la corretta comprensione dei risultati di prova da parte del cliente, di una parte terza o dell’autorità. Nei casi sopra descritti, il rapporto di prova errato viene annullato e sostituito con uno nuovo: il LSP provvederà a contattare il Cliente per avvertirlo dell’errore e del fatto che sarà inviato un nuovo rapporto di prova corretto. Non è richiesta al Cliente la restituzione del RdP errato, mentre è richiesta conferma scritta della ricezione del rapporto emesso in sostituzione.

In casi eccezionali in cui si renda necessaria la correzione di aspetti puramente formali (editoriali) su RdP già emessi senza modificarne la validità, può essere emesso un documento generale di correzione, purché siano garantite le informazioni previste dalla norma 17025:2018.

A seguito di richiesta scritta e motivata del cliente è possibile provvedere alla stampa di una copia del rapporto di prova che riporterà la dicitura “COPIA”.

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

NOTA INTRODUTTIVA ALLA TABELLA: Analiti, Metodi di Prova e Tariffario

I limiti inferiori del campo di applicazione corrispondono al limite di quantificazione e sono indicativi poiché possono subire piccole variazioni in dipendenza delle condizioni analitiche e dei risultati delle analisi dei bianchi.

Tabella: Analiti, Metodi di Prova e Tariffario

MATRICE SANGUE O SIERO

Qualora sia previsto l'impiego di anticoagulanti i campioni in fase di prelievo devono essere agitati ripetutamente ad evitare il formarsi di coaguli

Identificativo della prova di analisi

riportato nella ricevuta di accettazione – contratto

Xxxxxxx/i corrispondenti all'identificativo

Metodo di prova

Codice

Tariffario Regionale

Tariffario

Regionale

€

Campo di applicazione

Volume Minimo da

consegnare per l'analisi (ml)

Tipo di provetta

Acetilcolinoesterasi

Acetilcolinoesterasi

MP 025 Rev0/2006

SANGUE: Determinazione del contenuto di acetilcolinestersi e butirrilcolinestersi – Metodo spettrofotometrico

toa3

33,00

illimitato

2

Provetta con anticoagulante. Il campione deve pervenire in Laboratorio entro 24 ore dal prelievo.

Butirrilcolinoesterasi

Butirrilcolinoesterasi

MP 025 Rev0/2006

SANGUE: Determinazione del contenuto di acetilcolinestersi e butirrilcolinestersi – Metodo spettrofotometrico

toa22

33,00

illimitato

2

Idem sopra.

Cd AAS

Cadmio

MP 027 Rev0/2006

SANGUE: Determinazione del contenuto di cadmio – Metodo AAS ZEEMAN

toa32

39,00

≥ 0.3 µg/l

2

Provetta con anticoagulante. Se il campione viene consegnato dopo 24 ore dal prelievo deve essere congelato.


Met ICP (fino a 5) 🙪


Cadmio, cobalto, cromo, piombo, tallio in sangue o siero; manganese siero 🙪

MP 107a Rev3/2022

SANGUE e/o SIERO: Determinazione del contenuto di Cadmio (Cd), Cobalto (Co), Cromo totale (Cr), Manganese (Mn), Piombo (Pb), Tallio (Tl) - metodo ICP/MS


toa33


65,00


Cd, Co ≥ 0.2 µg/l; Tl ≥ 0.1 µg/l Cr, Pb ≥ 1 µg/l; Mn ≥ 0.6 µg/l


2


Contattare il Laboratorio per le modalità di prelievo del campione.

Cu

Rame serico

MP 030 Rev0/2006

SANGUE: Determinazione del contenuto di Rame - Metodo AAS - Fiamma

toa32

39,00

≥ 20 µg/l

1

Provetta di plastica senza anticoagulante (gel) o siero. Se il siero non è separato il campione deve pervenire entro 24

ore dal prelievo.

Hg - 🙪

Mercurio totale - 🙪

MP 028 2019 Rev. 9

SANGUE: Determinazione del contenuto di Mercurio totale - Metodo AAS - Vapori freddi

toa40

59,00

1.0 – 80 µg/l

2 provette con 5 ml di sangue

Provetta con anticoagulante. Se il campione viene consegnato dopo 24 ore dal prelievo deve essere congelato.

Pb AAS

Piombo

MP 031 Rev0/2006

SANGUE: Determinazione del contenuto di piombo – Metodo AAS ZEEMAN

toa32

39,00

≥ 60 µg/l

2

Provetta con anticoagulante. Il campione deve pervenire al Laboratorio non congelato entro 48 ore dal prelievo.

Proto IX

Protoporfirina IX libera ed eritrocitaria

MP 050 Rev0/2006

SANGUE: Determinazione del contenuto di protoporfirina IX libera ed eritrocitaria – Metodo fluorimetrico

toa47

39,00

illimitato

2

Provetta con anticoagulante. Il campione deve pervenire al Laboratorio non congelato entro 48 ore dal prelievo. Il cliente deve fornire l'ematocrito e l'emoglobina.

Zn

Zinco serico

MP 026 Rev0/2006

SANGUE: Determinazione del contenuto di Zinco - Metodo AAS - Fiamma

toa32

39,00

≥ 50 µg/l

1

Provetta di plastica senza anticoagulante (gel) o siero. Se il siero non è separato il campione deve pervenire entro 24

ore dal prelievo.

MATRICE URINA

Se i campioni sono consegnati dopo 24 ore dal prelievo devono essere congelati ad eccezione di quelli in cui è richiesta la determinazione di anestetici o altri composti organici volatili tal quali - Se il cliente desidera che il dato relativo alla prova venga corretto per la creatininuria è necessario venga consegnata una provetta in plastica contenente 10 ml di urina (la determinazione della creatinina urinaria viene eseguita da altro Laboratorio) – Qualora il campione di urina sia riferito alle 24 ore o a un diverso definito periodo il cliente deve indicare il volume di urina escreto nel periodo se desidera che il dato sia espresso come valore assoluto nel periodo di raccolta del campione

Identificativo della prova di analisi

riportato nella ricevuta di accettazione - contratto

Xxxxxxx/i corrispondenti all'identificativo

Metodo di prova

Codice

Tariffario Regionale

Tariffario

Regionale

€

Campo di applicazione

Volume Minimo da

consegnare per l'analisi (ml)

Tipo di provetta

1OHPU - 🙪

1-Idrossipirene - 🙪

MP 153 2022 Rev. 6

URINA: Determinazione di 1-idrossipirene - Metodo HPLC-FLD

toa39

53,00

0.05 - 60 µg/l

50

Contenitore in plastica schermato dalla luce con carta stagnola

2,5-Ex - 🙪

2,5-Esandione libero - 🙪

MP 032 2019 Rev. 9

URINA: Determinazione del contenuto di 2,5-Esandione libero - Metodo GC/MS

toa2

47,00

0.018 - 2 mg/l

10

Contenitore in plastica

3PBA - 🙪

Acido 3-fenossibenzoico - 🙪

MP 049 2019 Rev. 8

URINA: Determinazione del contenuto di acido 3-Fenossibenzoico - Metodo GC/MS

toa6

79,00

0.5 - 100 µg/l

20

Contenitore in plastica schermato dalla luce con carta stagnola


Ammine

Xxxxxxx, 0-xxxxxxxxxxxxxx, x-xxxxxxxxx, x-xxxxxxxxx, xxxxxxxxx, 0-xxxxxxxxxxxx,

0-xxxxx-0-xxxxxxxxxxxx, 2,4-diamminoanisolo, 2,4-diamminotoluene, o-dianisidina, 3,3'-diclorobenzidina, 3,3'-dimetilbenzidina, 4,4'-metilenbis-2-cloroanilina, 4,4'-metilendianilina, 2-metossi-5-metilanilina, 2-naftilammina, o-toluidina

MP 196 Rev0/2015

URINA: Determinazione della concentrazione di monoammine e diammine aromatiche – Metodo GC/MS


toa17


144,00


0.5 – 100 µg/l


30


Idem sopra

Cotinina

Cotinina

MP 197 Rev0/2015

URINA: Determinazione della concentrazione di cotinina – Metodo HPLC/MS

toa30

47,00

>2 µg/l

10

Contenitore in plastica

Acephate [2]

Acephate

MP 051 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di acephate e methamidophos - Metodo LC/MS

toa50

79,00

6 - 1000 µg/l

25

Contenitore in plastica schermato dalla luce con carta stagnola

2,4D/MCPA, la richiesta deve

specificare

il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [1] [2]


Acido 2,4-diclorofenossiacetico + acido 2-metil-4-cloro-fenossiacetico


MP 047 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di 2,4-D e MCPA - Metodo GC/MS


toa1


92,00


1.5 - 500 µg/l


50


Idem sopra

ALA [2]

Acido delta-amminolevulinico

MP 055 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di acido delta-amminolevulinico - Metodo spettrofotometrico

toa7

47,00

≥ 0.5 mg/l

5

Idem sopra

Alchilfosfati [2]

Dietilditiofosfato di potassio + dietilfosfato di potassio + dietiltiofosfato di potassio +

dimetilditiofosfato di potassio + dimetilfosfato di potassio + dimetiltiofosfato di sodio

MP 045 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di alchilfosfati - Metodo GC/MS

toa15

144,00

1.5 - 1500 µg/l

10

Idem sopra

Anestetici alogenati, la richiesta deve

specificare il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]


Alotano + isofluorano + sevofluorano + Desfluorano

MP 035 Rev1/2017

URINA: Determinazione di Alotano, Sevofluorano, Isofluorano e Desfluorano.

Metodo GC-MS


toa18


47,00


≥ 0.2 µg/l


10


Vial da spazio di testa contenente 3,5 g di NaCl chiusa ermeticamente con ghiera magnetica

As AAS

Arsenico inorganico + metaboliti metilati

MP 038 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di arsenico inorganico e metaboliti metilati - Metodo AAS ZEEMAN

toa20

59,00

1.5 – 100 µg/l

5

Contenitore in plastica

Cd AAS

Cadmio

MP 039 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di Cadmio - Metodo AAS-Zeeman

toa32

39,00

≥ 0.48 µg/l

5

Contenitore in plastica precedentemente lavato con acido nitrico

Cicloesanolo e cicloesandioli [1]

Cicloesanolo + cis,trans-1,4-cicloesandiolo + cis-1,2-cicloesandiolo + trans-1,2- cicloesandiolo

MP 033 Rev0/2006

URINA: Determinazione della concentrazione del cicloesanolo e cicloesandioli – Metodo in GC/MS

toa24

85,00

0.3 – 100 mg/l

10

Contenitore in plastica


COV – Fino a 5 componenti, la richiesta deve specificare il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato

1,1,1-Tricloroetano, 1,2-dicloropropano, 1-metossi-2-propilacetato, 2-metilesano, 3-

metilesano, 2-metilpentano, 3-metilpentano, 4-idrossi-4-metil-2-pentanone (diacetonalcol), acetone, acetonitrile, alcol butilico-sec, alcol butilico-terz, benzene, n-butanolo, bromodiclorometano, bromoformio, cellosolve acetato (2- etossietilacetato), cicloesano, cicloesanone, cloroformio, cumene, diclorometano, dibromoclorometano, etanolo, etere etilico, etilacetato, etilbenzene, isobutanolo, isobutilacetato, isopropanolo, isopropilacetato, o- m- e p-xilene, metanolo, metilacetato, metilcicloesano, metilciclopentano, metiletilchetone, metilisobutilchetone, metil-tert-butiletere (MTBE), n-butilacetato, n-eptano, n-esano,

n-pentano, n-propanolo, n-propilacetato, n-propilbenzene, solfuro di carbonio, stirene, tetracloroetilene, toluene, tricloroetilene, trimetilbenzeni, 1-bromopropano


MP 058 Rev0/2006

URINA: Determinazione di composti organici volatili – Metodo GC/MS


toa27


59,00


≥ 150 ng/l


10 oppure 43 in dipendenza del tipo di vial


Vial da spazio di testa contenente 3,5 g di NaCl chiusa ermeticamente con ghiera magnetica, altrimenti vial a chiusura ermetica da 43 ml riempita completamente di urina

COV – Da 6 a 10 componenti, idem

come sopra

Idem sopra

Idem sopra

toa28

72,00

≥ 150 ng/l

Idem sopra

Idem sopra

[1] = Il metodo analitico prevede la determinazione di tutti gli analiti indicati per cui il costo della prova sarà comunque quello riportato anche se il cliente richiede la determinazione di un numero inferiore di analiti

[2] = La determinazione analitica prevede un contatto preliminare con il Laboratorio da effettuare prima dell'invio dei campioni di prova

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

segue Tabella: Analiti, Metodi di Prova e Tariffario

MATRICE URINA

Se i campioni sono consegnati dopo 24 ore dal prelievo devono essere congelati ad eccezione di quelli in cui è richiesta la determinazione di anestetici o altri composti organici volatili tal quali - Se il cliente desidera che il dato relativo alla prova venga corretto per la creatininuria è necessario venga consegnata una provetta in plastica contenente 10 ml di urina (la determinazione della creatinina urinaria viene eseguita da altro Laboratorio) – Qualora il campione di urina sia riferito alle 24 ore o a un diverso definito periodo il cliente deve indicare il volume di urina escreto nel periodo se desidera che il dato sia espresso come valore assoluto nel periodo di raccolta del campione

Identificativo della prova di analisi

riportato nella ricevuta di accettazione - contratto

Xxxxxxx/i corrispondenti all'identificativo

Metodo di prova

Codice

Tariffario Regionale

Tariffario

Regionale

€

Campo di applicazione

Volume Minimo da

consegnare per l'analisi (ml)

Tipo di provetta

COV – Maggiore di 10 componenti, idem

come sopra

Idem sopra

Idem sopra

toa29

85,00

≥ 150 ng/l

Idem sopra

Idem sopra

BTEXS urina - 🙪

Benzene, toluene, etilbenzene, xileni, stirene - 🙪

MP 058.1 2019 Rev. 4

URINA: Determinazione della concentrazione di benzene, toluene, etilbenzene, xileni e stirene – Metodo GC/MS

toa27

59,00

0.5 - 50 µg/l

10 oppure 43 in

dipendenza del tipo di vial

Idem sopra

Cr AAS

Cromo

MP 040 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di Cromo - Metodo AAS-Zeeman

toa32

39,00

≥ 0.66 µg/l

5

Contenitore in plastica

Xx XXX

Xxxx

XX 000 Xxx0/0000

XXXXX: Determinazione del contenuto di rame – Metodo AAS

toa32

39,00

≥ 1.5 µg/l

10

Contenitore in plastica

3,4-Dicloroanilina [2]

3,4-Dicloroanilina

MP 085 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di 3,4- e 3,5-dicloroanilina - Metodo GC/MS

toa50

78,61

0.6 - 15 µg/l

25

Contenitore in plastica schermato dalla luce con carta stagnola

3,5-Dicloroanilina [2]

3,5-Dicloroanilina

MP 085 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di 3,4- e 3,5-dicloroanilina - Metodo GC/MS

toa50

78,61

0.6 - 15 µg/l

25

Idem sopra

ETU [2]

Etilentiourea

MP 046 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di etilentiourea - Metodo LC/MS

toa36

118,00

0.5 - 500 µg/l

40

Idem sopra

Fluoruri

Fluoruri

MP 065 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di fluoruri - Metodo con elettrodo selettivo

toa38

39,00

0.06 - 20 mg/l

20

Contenitore in plastica

HFIP

Alcol esafluoro isopropilico

MP 029 Rev0/2006

URINA: Determinazione di alcol esafluoro isopropilico. Metodo GC-MS

toa16

47,00

2.5 - 5000 µg/l

10

Idem sopra

Hg AAS - 🙪

Mercurio totale - 🙪

MP 041 2019 Rev. 10

URINA: Determinazione del contenuto di Mercurio totale - Metodo AAS - Vapori freddi

toa41

53,00

0.21 - 65 µg/l

15

Idem sopra

IPPA e MIPPA - 🙪

Acido Ippurico + acido o-metilippurico + acido m-metilippurico + acido p- metilippurico - 🙪

MP 052 2019 Rev. 11

URINA: Determinazione degli Acidi Ippurico, Orto-metilippurico, Meta- metilippurico e Para-metilippurico - Metodo HPLC-UV

toa9

47,00

10 – 2000 mg/l

5

Idem sopra

IPPA - 🙪

Acido Ippurico - 🙪

Idem sopra

toa10

27,00

10 – 2000 mg/l

5

Idem sopra

MIPPA - 🙪

Acido o-metilippurico + acido m-metilippurico + acido p-metilippurico - 🙪

Idem sopra

toa5

27,00

10 – 2000 mg/l

5

Idem sopra

Met ICP B – fino a 5 elementi, la richiesta

deve specificare il nome degli elementi da sottoporre ad analisi tra quelli riportati a lato


Argento, berillio, vanadio

MP 180 Rev2/2022

URINA: Determinazione del contenuto di Argento (Ag), Berillio (Be), Vanadio

(V) - Metodo ICP-MS


toa33


65,00


Ag, V ≥ 0.030 µg/l Be ≥ 0.050 µg/l

ottimale 10

minimo 2


Idem sopra

Met ICP A– fino a 5 elementi, la richiesta deve specificare il nome degli elementi da sottoporre ad analisi tra quelli riportati a lato - 🙪


Antimonio, arsenico totale, cadmio, cobalto, cromo totale, indio, manganese, nichel, piombo, platino, rame, tallio - 🙪

MP 107 2022 Ed. 3 Rev. 0

URINA: Determinazione del contenuto di Antimonio (Sb), Arsenico totale (As), Cadmio (Cd), Cobalto (Co), Cromo totale (Cr), Indio (In), Manganese (Mn), Nichel (Ni), Platino (Pt), Rame (Cu), Piombo (Pb), Tallio (Tl) - Metodo ICP-MS


toa33


65,00


In, Pt, Tl≥0.01 µg/l; Cr, Cd, Co, Ni, Mn ≥0.1 µg/l; Sb≥0.05 µg/l; Pb≥0.5 µg/l; As, Cu ≥1.0 µg/l


Idem sopra


Contenitore in plastica

Met ICP A– da 6 a 10 elementi, idem

come sopra - 🙪

Idem sopra

Idem sopra

toa34

130,00

Idem sopra

Idem sopra

Idem sopra

Met ICP A– > 10 elementi, idem come

sopra - 🙪

Idem sopra

Idem sopra

toa35

195,00

Idem sopra

Idem sopra

Idem sopra

Methamidophos [2]

Methamidophos

MP 051 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di acephate e methamidophos – Metodo LC/MS

toa50

78,61

6 – 1000 µg/l

25

Contenitore in plastica schermato dalla luce con carta stagnola

Ni AAS

Nichel

MP 042 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di nichel - Metodo AAS ZEEMAN

toa32

39,00

≥ 1.5 µg/l

20

Contenitore in plastica

PGA e MA - 🙪

Acido fenilgliossilico + acido mandelico - 🙪

MP 053 2019 Rev. 8

URINA: Determinazione degli acidi Mandelico e Fenilgliossilico - Metodo HPLC-UV

toa4

47,00

Acido fenilgliossilico 12 - 1600

mg/l

Acido mandelico 12 - 2000 mg/l

5

Idem sopra

Pb AAS

Piombo

MP 054 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di piombo - Metodo AAS ZEEMAN

toa32

39,00

≥ 1.5 µg/l

20

Idem sopra

PBG [2]

Porfobilinogeno

MP 056 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di porfobilinogeno - Metodo spettrofotometrico

toa46

47,00

≥ 0.5 mg/l

5

Contenitore in plastica schermato dalla luce con carta stagnola

Protossido di azoto

Protossido di azoto

MP 034 Rev0/2006

URINA: Determinazione protossido d’azoto - Metodo GC-ECD

toa19

47,00

≥ 2 µg/l

10

Vial da spazio di testa contenente 3,5 g di NaCl chiusa ermeticamente con ghiera magnetica

Spettro porfirine

Coproporfirina I + coproporfirina III + pentacarbossiporfirina +

esacarbossiporfirina + eptacarbossiporfirina + uroporfirina

MP 059 Rev0/2006

URINA: Determinazione dello spettro delle porfirine - Metodo HPLC-FLD

toa45

39,00

≥ 2.5 nmoli/l

25 (urine delle 24 ore)

Contenitore in plastica schermato dalla luce con carta stagnola. Il cliente deve indicare la diuresi delle 24 ore

TCA

Acido tricloroacetico

MP 060 Rev0/2006

URINA: Determinazione della concentrazione di acido tricloroacetico – Metodo in gascromatografia

toa13

39,00

0,010 – 20 mg/l

10

Contenitore in plastica

TCP [2]

3,5,6-Tricloro-2-piridinolo

MP 048 Rev0/2006

URINA: Determinazione del contenuto di 3,5,6-Tricloro-2-piridinolo - Metodo GC/MS

toa50

79,00

1.5-1000 µg/l

25

Contenitore in plastica schermato dalla luce con carta stagnola

TTMUCA - 🙪

Acido t,t-muconico - 🙪

MP 061 2019 Rev. 9

URINA: Determinazione del contenuto di acido trans,trans–muconico - Metodo HPLC-UV

toa12

42,00

≥ 10 µg/l

20

Contenitore in plastica

Xx XXX

Xxxxx

XX 000 Xxx0/0000

XXXXX: Determinazione del contenuto di zinco – Metodo AAS

toa32

39,00

≥ 10 µg/l

10

Idem sopra

[2] = La determinazione analitica prevede un contatto preliminare con il Laboratorio da effettuare prima dell'invio dei campioni di prova

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

segue Tabella: Analiti, Metodi di Prova e Tariffario



INQUINANTI AERODISPERSI C

APTATI SU

SUPPORTI

VARI



Identificativo della prova di analisi

riportato nella ricevuta di accettazione - contratto

Analita/i corrispondenti all'identificativo

Metodo di prova

Codice

Tariffario Regionale

Tariffario

Regionale

€

Campo di applicazione

Sistema di Captazione

Avvertenze

5-FU

5-Fluorouracile

MP 063 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione della concentrazione di 5- fluorouracile aerodisperso – Metodo in HPLC

ach1

65,00

0.1 – 100 µg/campione

Membrana in fibra di vetro

Consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Acidi – La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato

Acido cloridrico, acido fluoridrico, acido fosforico, acido nitrico

MP 001 Rev0/2006

FIALE DI SILICE O DISPOSITIVI FILTRANTI DELL’ARIA: Determinazione

del contenuto di acidi inorganici aerodispersi - Metodo in cromatografia ionica

ach2

47,00

Acidi cloridrico, fluoridrico,

nitrico ≥ 1 µg/fiala Acido fosforico ≥ 3 µg/fiala

Fiala di silice

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Acido solforico

Nebbie di acido solforico

MP 001.1 Rev1/2015

SUBSTRATI FILTRANTI: Determinazione del contenuto di nebbie di acido solforico nella frazione toracica - Metodo in cromatografia ionica

ach3

47,00

≥ 10 µg/campione

Membrana

Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Acido solfidrico

Acido solfidrico

MP 207 Rev0/2015

CAMPIONATORI PASSIVI A DIFFUSIONE RADIALE RADIELLO:

Determinazione di acido solfidrico – Metodo spettrofotometrico

ach45

27,00

0.19 µg/campione

Radiello per acido solfidrico

Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Il campione deve essere conservato in frigorifero prima della consegna al Laboratorio.

Acrilammide

Acrilammide

MP 235 Rev 0/2020

FIALE DI AMBERLITE: Determinazione della concentrazione di acrilammide – Metodo LC/MS/MS

ach33

59,00

≥ 20 ng/campione

Fiala XAD7

Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Aldeidi fiala – La richiesta deve specificare

il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato

Acroleina, aldeide acetica, aldeide formica, aldeide glutarica attiva o inattivata

MP 057 Rev0/2006

FIALE: Determinazione del contenuto di aldeidi - Metodo HPLC-UV

ach4

27,00

per singolo composto

0.15 - 40 µg/fiala

Fiala con 2,4- dinitrofenil idrazina

Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce e conservati in frigorifero a 4°C prima della consegna in Laboratorio

Xxxxxxx Xxxxxxxx - 🙪

– La richiesta deve specificare il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato


Formaldeide, acetaldeide - 🙪

MP 005 2019 Rev. 8

CAMPIONATORI PASSIVI A DIFFUSIONE RADIALE RADIELLO®:

Determinazione della concentrazione di formaldeide e acetaldeide – Metodo HPLC-UV


ach5

21,00

per singolo composto


0.150 - 100 µg/radiello


Radiello per aldeidi


Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce e conservati in frigorifero a 4°C prima della consegna in Laboratorio

Analisi gravimetrica

Substrati filtranti e particelle aerodisperse depositate - 🙪

MP 012 2023 Rev. 9

SUBSTRATI FILTRANTI: Determinazione gravimetrica

pef4

39,00

0.03 – 10 mg/campione

Membrana

Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Il tipo di supporto

dipende dalla tipologia dell'eventuale analisi successiva.

Anestetici alogenati, la richiesta deve

specificare il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]


Alotano + isofluorano + sevofluorano + desfluorano

MP 037 Rev1/2017

CAMPIONATORI PASSIVI A DIFFUSIONE RADIALE RADIELLO®:

Determinazione di Alotano, Sevoflorano, Isofluorano e Desfluorano aerodispersi - Metodo GC-MS


ach7


65,00


≥ 0.04 µg/Radiello


Radiello per anestetici


Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Asbesto microscopia elettronica - 🙪

Amianto – Fibre aerodisperse - 🙪

D.M. 06/09/1994 GU n°288 del 10/12/1994 All. 2 met B (escluso il

campionamento)

pef6

521,00

-

Membrana in

policarbonato

Consegnare 2 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Asbesto microscopia elettronica (su

campioni di aria prelevati dalla USL competente ai fini della restituibilità di ambienti bonificati - art 6 legge 27-3-1992

n. 257) - 🙪


Amianto – Fibre aerodisperse - 🙪


D.M. 06/09/1994 GU n°288 del 10/12/1994 All. 2 met B (escluso il campionamento)


pef6 tris


350,00


-


Membrana in policarbonato


Consegnare 2 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Asbesto microscopia ottica - 🙪

Amianto – Fibre aerodisperse - 🙪

D.M. 06/09/1994 GU n°288 del 10/12/1994 All. 2 met A (escluso il campionamento)

pef3

130,00

-

Membrana quadrettata

in esteri misti di cellulosa

Idem sopra

Azossistrobina [2]

Azoxystrobin

MP 080 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Azoxystrobin aerodispersa - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 30 ng/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.


BTEX - 🙪


Benzene + toluene + etilbenzene + xileni - 🙪

MP 014.1 2021 Rev. 7

CAMPIONATORI ATTIVI E PASSIVI A DIFFUSIONE RADIALE

RADIELLO®: Determinazione della concentrazione di benzene, toluene, etilbenzene e xileni – Metodo GC/MS

Fiala

ach19

59,00

Fiala: 0.3 - 300 µg/campione

(toluene 1 - 300 µg/campione)

Radiello: 0.6 – 600 µg/campione


Fiala o radiello in carbone attivo


Consegnare 4 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Radiello

ach13

47,00


Clorurati, la richiesta deve specificare il nome delle sostanze da analizzare tra quelle riportate a lato - 🙪


Tricloroetilene + tetracloroetilene + 1,2-dicloropropano - 🙪

MP 014.2 2021 Rev. 1

CAMPIONATORI PASSIVI A DIFFUSIONE RADIALE RADIELLO®:

Determinazione della concentrazione di tricloroetilene, tetracloroetilene e 1,2-dicloropropano – Metodo GC/MS


ach13


47,00

Tricloroetilene 0,20-240

µg/camp Tetracloroetilene 0,20-270 µg/camp

1,2-dicloropropano 0,20-200 µg/camp


Radiello in carbone attivo


Consegnare 4 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Cimoxanil [2]

Cymoxanil

MP 082 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Cymoxanil aerodisperso - Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 300 ng/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Clortalonil [2]

Chlorothalonil

MP 004.5 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Chlorothalonil aerodisperso - Metodo HPLC-UV o LC-MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Cotinina e Nicotina Membrane

Cotinina e Nicotina

MP 232 Rev0/2017

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Cotinina e Nicotina - Metodo LC/MS

ach43

92,00

≥ 0.01 µg/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato.

Cotinina e Nicotina Fiale

Cotinina e Nicotina

MP 233 Rev0/2017

FIALE AMBERLITE: Determinazione del contenuto di Cotinina e Nicotina - Metodo GC/MS

ach44

59,00

≥ 0.01 µg/campione

Fiala di amberlite (XAD2 o XAD4)

Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato.


COV Radiello – Fino a 5 componenti, la richiesta deve specificare il nome delle sostanze da analizzare tra quelle riportate a lato

1,1,1-Tricloroetano, 1,2-dicloropropano, 1-metossi-2-propanolo, 1-metossi-2-

propilacetato, 2,4-dimetilpentano, 2-butossietilacetato (butilcellosolve acetato), 2- metilesano, 2-metilpentano, 3-metilesano, 3-metilpentano, 4-idrossi-4-metil-2- pentanone (diacetonalcol), acetone, acetonitrile, alcool butilico-sec, alcool butilico-terz, benzene, butilcellosolve (2-butossietanolo), cellosolve (2- etossietanolo), cellosolve acetato (2-etossietilacetato), cicloesano, cicloesanone, cloroformio, cumene (isopropilbenzene), diclorometano, etanolo, etere etilico, etilacetato, etilbenzene, isobutanolo, isobutilacetato, isopropanolo, isopropilacetato, metanolo, metilacetato, metilcellosolve (2-metossietanolo), metilcicloesano, metilciclopentano, MEK, metilisobutilchetone (MIBK), metil- tert-butiletere (MTBE), n-butanolo, n-butilacetato, n-eptano, n-esano, n-pentano, n-propanolo, n-propilacetato, n-propilbenzene, o-m- e p-xilene, solfuro di carbonio, stirene, tetracloroetilene, toluene, tricloroetilene, trimetilbenzeni, bromodiclorometano, dibromoclorometano, bromoformio, metilmetacrilato


MP 014 Rev0/2006

CAMPIONATORI ATTIVI E PASSIVI: Determinazione di composti organici volatili aerodispersi – Metodo GC/FID o GC/MS


ach13


47,00


Fiala da 100 mg: ≥ 0.3 µg/campione in GC/MS Xxxxxxxx: ≥ 0.6 µg/campione in GC/MS


Fiala o Radiello in carbone attivo


Consegnare 4 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

COV Radiello – Da 6 a 10 componenti,

idem come sopra

Idem sopra

Idem sopra

ach14

65,00

Idem sopra

Idem sopra

Idem sopra

COV Radiello – Maggiore di 10

componenti, idem come sopra

Idem sopra

Idem sopra

ach15

79,00

Idem sopra

Idem sopra

Idem sopra

COV Fiala – Fino a 5 componenti, la

richiesta deve specificare il nome delle sostanze da analizzare tra quelle riportate a lato


Idem sopra

MP 014 Rev0/2006

CAMPIONATORI ATTIVI E PASSIVI: Determinazione di composti organici volatili aerodispersi – Metodo GC/FID o GC/MS


ach19


59,00


Idem sopra


Idem sopra


Idem sopra

COV Fiala – Da 6 a 10 componenti, idem

come sopra

Idem sopra

Idem sopra

ach20

79,00

Idem sopra

Idem sopra

Idem sopra

COV Fiala – Maggiore di 10 componenti,

idem come sopra

Idem sopra

Idem sopra

ach21

93,00

Idem sopra

Idem sopra

Idem sopra

Cr VI – La richiesta deve specificare se si

desidera la determinazione della forma

solubile o insolubile - 🙪

Cromo esavalente composti solubili in acqua, cromo esavalente composti insolubili - 🙪

MP 009 2021 Rev. 7

MEMBRANE IN PVC: Determinazione della concentrazione di cromo esavalente – Metodo UV-Vis o IC

ach22

52,00

0.10 - 12 µg/campione per CrVI solubile e insolubile

Membrana in PVC

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

segue Tabella: Analiti, Metodi di Prova e Tariffario



INQUINANTI AERODISPERSI

CAPTATI S

U SUPPORTI

VARI



Identificativo della prova di analisi

riportato nella ricevuta di accettazione - contratto

Analita/i corrispondenti all'identificativo

Metodo di prova

Codice

Tariffario Regionale

Tariffario

Regionale

€

Campo di applicazione

Sistema di Captazione

Avvertenze

Dinocap [2]

Dinocap

MP 083 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Dinocap aerodisperso - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 3 µg/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.

DL – La richiesta deve specificare il nome

delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]

Deltamethrina, Lambda-cialotrina

MP 004.4 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di deltametrina e lambda-cialotrina aerodisperse - Metodo HPLC-UV

ach30

92,00

per singolo composto

≥3 µg/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Idem sopra

ETU [2]

Etilentiourea

MP 004.2 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di etilentiourea aerodispersa - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Fibre MO – La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da analizzare tra quelle riportate a lato

Fibre artificiali-frazione respirabile, fibre di vetro a filamento continuo-frazione inalabile, fibre ceramiche refrattarie-frazione respirabile, fibre totali

MP 002 Rev0/2006

MEMBRANE FILTRANTI: Determinazione della concentrazione di fibre aerodisperse – Metodo in microscopia ottica a contrasto di fase

pef3

130,00

-

Membrana quadrettata

in esteri misti di cellulosa

Consegnare 2 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Fito A membrana – La richiesta deve specificare il nome delle sostanze da analizzare tra quelle riportate a lato [2]


Azinphos metile, clorpirifos metile, clorpirifos etile, dimetoato, fenitrotion, ometoato, tolclofos metile

MP 004.1 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO E FIALE DI AMBERLITE:

Determinazione del contenuto di esteri organofosforici aerodispersi - Metodo GC/MS o LC-MS


ach33

59,00

per singolo composto


≥ 300 ng/campione

Fiala XAD2 e membrana in fibra di vetro priva di leganti


Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Fito A fiala – La richiesta deve specificare il nome delle sostanze da analizzare tra quelle riportate a lato [2]


Azinphos metile, clorpirifos metile, clorpirifos etile, dimetoato, fenitrotion, ometoato, tolclofos metile

MP 004.1 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO E FIALE DI AMBERLITE:

Determinazione del contenuto di esteri organofosforici aerodispersi - Metodo GC/MS o LC-MS


ach32

72,00

per singolo composto


≥ 300 ng/campione

Fiala XAD2 e membrana in fibra di vetro priva di leganti


Idem sopra

Folpet [2]

Folpet

MP 081 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Folpet aerodisperso - Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 3 µg/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Idem sopra

FQ – La richiesta deve specificare il nome

della sostanza da analizzare tra quelle riportate a lato [2]

Fenamidone, quinoxifen

MP 044 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Quinoxifen e Fenamidone aerodispersi- Metodo GC/MS

ach31

60,00

per singolo composto

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.


GT – La richiesta deve specificare il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato


Acido solfidrico, biossido di zolfo, biossido di azoto, ossido di azoto, ossido di carbonio, biossido di carbonio


MP 067 Rev0/2006

Determinazione di gas tossici aerodispersi - Metodo a lettura diretta con analizzatore a cella elettrochimica


ach34


20,00

per singolo composto

Acido solfidrico 2 – 500 ppm

biossido di zolfo 0.2 – 50 ppm biossido di azoto 0.2 – 50 ppm ossido di azoto 1 – 100 ppm ossido di carbonio 2 -1000 ppm

biossido di carbonio 0.01 – 5%


Sacca in tedlar


-


Ammoniaca


Ammoniaca

MP 183 Rev0/2015

Campionatori attivi e passivi: determinazione di ammoniaca. Metodo IC o spettrofotometrico


ach47


27,00


Fiala da 200 mg: ≥ 0.25 µg/campione

Radiello: ≥ 0.25 µg/campione

Fiala gel di silice

trattata con acido solforico Radiello per ammoniaca


Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Il campione deve essere conservato in frigorifero prima della consegna al Laboratorio.

Hg

Mercurio elemento e forme inorganiche come Hg

MP 010 Rev0/2006

FIALE HYDRAR®: Determinazione della concentrazione di mercurio - Metodo AAS-Vapori freddi

ach29

47,00

0.04 – 1.2 µg/fiala

Fiala Hydrar

Consegnare 6 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato


NO2 e SO2, HF - La richiesta deve specificare il nome della sostanza da sottoporre ad analisi


Biossido di azoto, Biossido di zolfo, acido fluoridrico


MP 185.1 Rev1/2017

Campionatori attivi e/o passivi: determinazione di biossido di azoto, biossido di zolfo e acido fluoridrico. Metodo IC


ach42


27,00

per singolo composto

Biossido di azoto Fiala da 400 mg

TEA: ≥ 0.25 µg/campione Radiello: ≥ 0.25 µg/campione

Biossido di xxxxx Xxxxxxxx: ≥ 0.80 µg/campione

Acido fluoridrico Radiello: ≥ 0.20 µg/campione

Fiala con TEA su

setacci molecolari per biossido di azoto Radiello per biossido di azoto, biossido di zolfo e acido fluoridrico


Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Il campione deve essere conservato in frigorifero prima della consegna al Laboratorio.


NO


Ossido di azoto


MP 185.2 Rev0/2015

Campionatori attivi: determinazione di ossido di azoto. Metodo IC


ach46


27,00


Fiala 400 mg TEA + 800 mg ossidante + 400 mg TEA: ≥ 0.25 µg/campione

Fiala con TEA su

setacci molecolari + fiala ossidante (contenente cromato) + fiala con TEA su setacci molecolari


Idem sopra

Imidacloprid [2]

Imidacloprid

MP 004.6 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Imidacloprid aerodisperso - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.


IPA

5-Metilcrisene + acenaftene + antracene + benzo(a)antracene + benzo(a)pirene +

benzo(b)fluorantene + benzo(ghi)perilene + benzo(j)fluorantene + benzo(k)fluorantene + crisene + dibenzo(a,e)pirene + dibenzo(a,h)antracene + dibenzo(a,l)pirene + fenantrene + fluorantene + fluorene + indeno(1,2,3-cd)pirene

+ naftalene + pirene

MP 006 Rev0/2006

MEMBRANE IN TEFLON E FIALE XAD2: Determinazione di Idrocarburi policiclici aromatici aerodispersi - Metodo HPLC-FLD


ach35


92,00


Benzo(a)pirene ≥ 0.5 ng/membrana Benzo(a)pirene ≥ 2 ng/fiala


Fiala XAD2 + membrana in Teflon


Consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Isocianati – La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]

MDI, 2,4-TDI, 2,6-TDI, HDI, IPDI

MP 007 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO CON 1,2-PIRIDIL PIPERAZINA:

Determinazione di diisocianati aerodispersi - Metodo HPLC - FLD

ach23

59,00

MDI e 2,4-TDI e 2,6-TDI ≥ 30

ng/campione

HDI e IPDI ≥ 60 ng/campione

Membrana preparata dal LSP

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Lufenuron [2]

Lufenuron

MP 078 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Lufenuron aerodisperso - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Idem sopra

Malathion [2]

Malathion

MP 013 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di malathion aerodisperso – Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

MEPE – La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]

Metalaxyl, penconazolo

MP 091 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Metalaxyl e Penconazolo aerodispersi - Metodo GC/MS

ach31

60,00

per singolo composto

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Met AAS – La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato

Arsenico, cadmio, cromo, indio, nichel, piombo, rame, zinco

MP 008 Rev0/2006

MEMBRANE IN ESTERI MISTI DI CELLULOSA: Determinazione della concentrazione di metalli aerodispersi – Metodo AAS ZEEMAN

ach25

47,00

per singolo composto

≥ 0.05 µg/campione

Membrana esteri misti di cellulosa

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 7 campioni

Met ICP fino a 5 elementi – La richiesta

deve specificare il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato


Antimonio, argento, arsenico, berillio, cadmio, cobalto, cromo, indio, manganese, nichel, piombo, platino, rame, tallio, vanadio

MP 107b Rev0/2012

MEMBRANE IN ESTERI MISTI DI CELLULOSA: Determinazione del contenuto di elementi – Metodo ICP-MS


ach26


65,00


≥ 0.05 µg/campione


Idem sopra


Idem sopra

Met ICP da 6 a 10 elementi, idem come

sopra

Idem sopra

Idem sopra

ach27

130,00

Idem sopra

Idem sopra

Idem sopra

Met ICP superiore a 10 elementi, idem

come sopra

Idem sopra

Idem sopra

ach28

195,00

Idem sopra

Idem sopra

Idem sopra

MMZ – La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]

Mancozeb, maneb, zineb

MP 004.3 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO – Determinazione del contenuto di etilenbisditiocarbammati aerodispersi - Metodo LC/MS

ach30

92,00

per singolo composto

≥ 3 µg/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Methomyl [2]

Methomyl

MP 004.7 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Methomyl aerodisperso - Metodo LC-MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Pirimetanil [2]

Pyrimetanil

MP 077 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Pyrimetanil aerodisperso - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

segue Tabella: Analiti, Metodi di Prova e Tariffario



INQUINANTI AERODISPERSI

CAPTATI S

U SUPPORTI

VARI



Identificativo della prova di analisi

riportato nella ricevuta di accettazione - contratto

Analita/i corrispondenti all'identificativo

Metodo di prova

Codice

Tariffario Regionale

Tariffario

Regionale

€

Campo di applicazione

Sistema di Captazione

Avvertenze

Polvere

Particelle aerodisperse depositate su membrana 🙪

MP 012 2022 Rev. 8

SUBSTRATI FILTRANTI: Determinazione gravimetrica

pef4

39,00

0.03 – 10 mg/campione

Membrana

Consegnare 3 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Polvere di legno

Particelle di legno aerodisperse depositate su membrana 🙪

MP 012 2022 Rev. 8

SUBSTRATI FILTRANTI: Determinazione gravimetrica

pef4

39,00

0.03 – 10 mg/campione

Membrana

Idem sopra

Procimidone [2]

Procymidone

MP 079 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di Procymidone aerodisperso - Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 300 ng/campione

Membrana in fibra di vetro priva di leganti

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Propiconazolo [2]

Propiconazolo

MP 084 Rev0/2006

MEMBRANE IN FIBRA DI VETRO: Determinazione del contenuto di propiconazolo aerodisperso - Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Protossido di azoto

Protossido di azoto

MP 036 Rev0/2006

CAMPIONATORI PASSIVI A DIFFUSIONE RADIALE RADIELLO®:

Determinazione protossido d’azoto aerodisperso - Metodo GC-ECD

ach38

65,00

≥ 0.10 µg/radiello

Radiello per anestetici

Consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

Silice su spugne poliuretaniche - 🙪


Quarzo, cristobalite - 🙪

MP 015 2021 Rev. 8

MEMBRANE IN PVC O SPUGNE POLIURETANICHE: Determinazione

della silice libera cristallina aerodispersa nella frazione respirabile – Metodo in diffrattometria a raggi X

pef2

130,00

Quarzo 9 – 400 µg/campione

Cristobalite 14 – 400 µg/campione

Spugna poliuretanica


Consegnare 1 supporto di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non ha campionato

Silice su membrana PVC - 🙪

pef2

130,00

Quarzo 9 – 400 µg/campione

Cristobalite 8 – 400 µg/campione

Membrana in PVC

MATERIALI (pads, wipe test, liquidi di lavaggio delle mani, materiali vari) – Qualora il cliente fornisca la superficie del pad o, per i wipe test, l'area sottoposta a campionamento il Laboratorio nell'allegato al rapporto di prova riporterà il risultato espresso per unità di superficie

Identificativo della prova di analisi

riportato nella ricevuta di accettazione - contratto

Analita/i corrispondenti all'identificativo

Metodo di prova

Codice

Tariffario Regionale

Tariffario

Regionale

€

Campo di applicazione

Sistema di captazione

Xxxxxxxxxx

0-XX WT

5-Fluorouracile

MP 062.1 2019 Rev. 9

WIPE TEST IN TESSUTO NON TESSUTO (TNT): Determinazione della concentrazione di 5-fluorouracile – Metodo in HPLC-UV

ach1

65,00

> 0.030 µg/campione

Wipe test in tessuto non tessuto (TNT)

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I

campioni devono essere schermati dalla luce.Umidificare i campioni con soluzione alcalina ottenuta aggiungendo a 2 L di acqua deionizzata 1 mL di NaOH 1,25M


5-FU P


5-Fluorouracile

MP 062.2 2019 Rev. 7

PADS IN TESSUTO NON TESSUTO (TNT): Determinazione della concentrazione di 5-fluorouracile – Metodo in HPLC-UV


ach1


65,00


> 0.030 µg/campione

Pads in tessuto non

tessuto (TNT) quadrati x xxxxxxx con aree comprese tra 4 e 20 cm2


Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I campioni devono essere schermati dalla luce.


5-FU - 🙪


5-Fluorouracile - 🙪

MP 176 2021 Ed 2 Rev. 3

GARZE IN TESSUTO NON TESSUTO (TNT): Determinazione della concentrazione di ciclofosfamide, ifosfamide, 5-fluorouracile e metotrexate - Metodo LC-MS/MS


ach9


93,00


> 1 ng/campione

Wipe test o pads in tessuto non tessuto (TNT)

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I pads

possono essere quadrati x xxxxxxx e le aree devono essere comprese tra 4 e 20 cm2.

Gli wipe test sono umidificati con soluzione alcalina ottenuta aggiungendo a 2 L di acqua deionizzata 1 mL di NaOH 1,25M. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Acrilammide

Acrilammide

MP 236 Rev 0/2020

GARZE IN TESSUTO NON TESSUTO: Determinazione della concentrazione di acrilammide – Metodo LC/MS/MS

ach33

59,00

≥ 30 ng/campione

Wipe test

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Gli wipe test sono umidificati con acqua


Asbesto mg/kg


Amosite + antofillite + crisotilo + crocidolite + tremolite

MP 018 Rev0/2006

MATERIALI: Determinazione della concentrazione di amianto – Metodo in diffrattometria a raggi X


pef1


195,00

Amosite 14 – 100 µg / Antofillite

17 – 100 µg / Crisotilo 25 – 100 µg / Crocidolite 16 – 200 µg / Tremolite 31 – 100 µg


Campione di materiale


Il campione deve essere rappresentativo, di dimensioni dell'ordine di circa 5x10 cm e quanto rimane deve essere ritirato con il Rapporto di prova.

Asbesto % in peso

Amosite + antofillite + crisotilo + crocidolite + tremolite

D.M. 06/09/1994 GU n°288 del 10/12/1994 All.1 Met A (escluso campionamento)

pef1

195,00

20-100 µg/campione-tutte le forme

Campione di materiale

Il campione deve essere rappresentativo, di dimensioni dell'ordine di circa 5x10 cm. Nel caso di campioni in forma non

aggregata (fibre o polveri), contattare il Laboratorio per concordare quantità e modalità di consegna. Il campione residuo dopo l'analisi deve essere ritirato ai fini dello smaltimento.

Asbesto analisi qualitativa MODC

Amosite + antofillite + crisotilo + crocidolite + tremolite

D.M. 06/09/1994 GU n°288 del 10/12/1994 All. 3

pef8

65,00

-

Campione di materiale

Idem sopra

Asbesto analisi qualitativa SEM

Amosite + antofillite + crisotilo + crocidolite + tremolite

MP 212 Rev1/2018 - MATERIALI: Determinazione della presenza/assenza di

amianto mediante microscopia elettronica a scansione

pef5

326,00

-

Campione di materiale

Idem sopra

Fibre SEM

Fibre artificiali vetrose

MP 234 Rev1/2020 - MATERIALE FIBROSO IN MASSA: misura dei diametri

ponderata rispetto alla lunghezza – Metodo in microscopia elettronica a scansione

pef5

326,00

-

Campione di materiale

Contattare il Laboratorio per concordare quantità e modalità di consegna dei materiali.

Azacitidina

Azacitidina

MP 213 Rev1/2021

WIPE TEST O PADS IN TESSUTO NON TESSUTO (TNT): Determinazione

della concentrazione di azacitidina - Metodo LC-MS/MS

ach9

93,00

≥ 0.010 µg/campione

Wipe test o pads in

tessuto non tessuto (TNT)

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I

campioni devono essere schermati dalla luce ed immediatamente congelati. Gli wipe test sono umidificati con tampone fosfato a pH=7, 0,01M

Azossistrobina [2]

Azoxystrobin

MP 072 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Azoxystrobin - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 30 ng/campione

Pads (α-cellulosa),

liquidi di lavaggio mani (etanolo)

Per i pads consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Per i lavaggi mani consegnare un campione del liquido utilizzato per il lavaggio. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Fibre di asbesto in BAL/Tessuti umani Se trattasi di tessuti umani la richiesta

deve specificare il tipo di tessuto

Crisotilo + anfiboli

MP 108 Rev1/2018 - LIQUIDI DI LAVAGGIO BRONCOALVEOLARE E

TESSUTI BIOLOGICI: Determinazione della concentrazione di fibre di asbesto – Metodo in microscopia elettronica a scansione

pef6 bis

521,00

-

BAL o tessuti umani

Consegnare al Laboratorio almeno 10 ml di campione.

Corpuscoli di asbesto in BAL/Tessuti umani. Se trattasi di tessuti umani la

richiesta deve specificare il tipo di tessuto.

Corpuscoli di Asbesto

MP 206 Rev0/2016 - LIQUIDI DI LAVAGGIO BRONCOALVEOLARE E

TESSUTI BIOLOGICI: Determinazione della concentrazione di corpuscoli di asbesto – Metodo in microscopia ottica a contrasto di fase (MOCF)

pef3

130,00

-

BAL o tessuti umani

Idem sopra


Ciclofosfamide - 🙪


Ciclofosfamide - 🙪

MP 176 2021 Ed 2 Rev. 3

GARZE IN TESSUTO NON TESSUTO (TNT): Determinazione della concentrazione di ciclofosfamide, ifosfamide, 5-fluorouracile e metotrexate - Metodo LC-MS/MS


ach9


93,00


> 1 ng/campione

Wipe test o pads in tessuto non tessuto (TNT)

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I pads possono essere quadrati x xxxxxxx e le aree devono essere comprese tra 4 e 20 cm2.

Gli wipe test sono umidificati con soluzione alcalina ottenuta aggiungendo a 2 L di acqua deionizzata 1 mL di NaOH 1,25M. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Cimoxanil [2]

Cymoxanil

MP 074 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Cymoxanil - Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 300 ng/campione

Pads (α-cellulosa),

liquidi di lavaggio mani (etanolo)

Per i pads consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Per i lavaggi mani consegnare un campione del liquido utilizzato per il lavaggio. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Clortalonil [2]

Chlorothalonil

MP 016.5 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Chlorothalonil - Metodo LC-MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Dinocap [2]

Dinocap

MP 075 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Dinocap - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 3 µg/campione

Idem sopra

Idem sopra

DL – La richiesta deve specificare il nome

delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]

Deltamethrina, lambda-cialotrina

MP 016.4 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di deltametrina e lambda-cialotrina - Metodo HPLC-UV

ach30

92,00

per composto

≥ 3 µg/campione

Idem sopra

Idem sopra

ETU [2]

Etilentiourea

MP 016.2 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di etilentiourea - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Folpet [2]

Folpet

MP 073 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Folpet - Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 3 µg/campione

Idem sopra

Idem sopra

FQ – La richiesta deve specificare il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]


Fenamidone, quinoxifen

MP 087 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Quinoxifen e Fenamidone - Metodo GC/MS


ach31

60,00

per singolo composto


≥ 300 ng/campione


Idem sopra


Idem sopra

Hg

Mercurio elemento e forme inorganiche come Hg

MP 086 Rev0/2006

PADS DI FIBRA DI VETRO: Determinazione della concentrazione di mercurio – Metodo AAS - Vapori freddi

ach29

47,00

≥ 300 ng/campione

Pads (fibra di vetro)

Consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato

[2] = La determinazione analitica prevede un contatto preliminare con il Laboratorio da effettuare prima dell'invio dei campioni di prova

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

segue Tabella: Analiti, Metodi di Prova e Tariffario


MATERIALI (pads, wipe test, liquidi di lavaggio delle mani, ma

teriali vari) – Qualora il cliente fornisca la superficie del pad o, per i wipe te

st, l'area sott

oposta a cam

pionamento il Laboratorio nell'al

legato al rapporto di p

rova riporterà il risultato espresso per unità di superficie

Identificativo della prova di analisi

riportato nella ricevuta di accettazione - contratto

Analita/i corrispondenti all'identificativo

Metodo di prova

Codice

Tariffario Regionale

Tariffario

Regionale

€

Campo di applicazione

Sistema di captazione

Avvertenze


Ifosfamide - 🙪


Ifosfamide - 🙪

MP 176 2021 Ed 2 Rev. 3

GARZE IN TESSUTO NON TESSUTO (TNT): Determinazione della concentrazione di ciclofosfamide, ifosfamide, 5-fluorouracile e metotrexate - Metodo LC-MS/MS


ach40


93,00


> 2 ng/campione

Wipe test o pads in tessuto non tessuto (TNT)

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I

pads possono essere quadrati x xxxxxxx e le aree devono essere comprese tra 4 e 20 cm2.

Gli wipe test sono umidificati con soluzione alcalina ottenuta aggiungendo a 2 L di acqua deionizzata 1 mL di NaOH 1,25M. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Imidacloprid [2]

Imidacloprid

MP 016.6 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Imidacloprid - Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 300 ng/campione

Pads (α-cellulosa),

liquidi di lavaggio mani (etanolo)

Per i pads consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Per i lavaggi mani consegnare un campione del liquido utilizzato per il lavaggio. I campioni devono essere schermati dalla luce.


IPA LM

5-Metilcrisene + acenaftene + antracene + benzo(a)antracene + benzo(a)pirene +

benzo(b)fluorantene + benzo(ghi)perilene + benzo(j)fluorantene + benzo(k)fluorantene + crisene + dibenzo(a,e)pirene + dibenzo(a,h)antracene + dibenzo(a,l)pirene + fenantrene + fluorantene + fluorene + indeno(1,2,3-cd)pirene

+ naftalene + pirene

MP 019 Rev0/2006

LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione di Idrocarburi policiclici aromatici - Metodo HPLC-FLD


ach36


65,00


Benzo(a)pirene ≥ 0.25 ng/ml


Liquidi di lavaggio mani (etanolo)


Consegnare un campione del liquido utilizzato per il lavaggio. I campioni devono essere schermati dalla luce.

IPA P

Idem sopra

MP 021 Rev0/2006

PADS E WIPE: Determinazione di Idrocarburi policiclici aromatici - Metodo HPLC-FLD

ach36

65,00

Benzo(a)pirene ≥ 0.5 ng/pad Benzo(a)pirene ≥ 2 ng/wipe

Pads (polipropilene),

wipe test tessuto non tessuto (TNT)

Consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I campioni devono essere schermati dalla luce. Gli wipe test sono umidificati con isopropanolo

Lufenuron [2]

Lufenuron

MP 070 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di lufenuron – Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Pads (α-cellulosa),

liquidi di lavaggio mani (etanolo)

Per i pads consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Per i lavaggi mani consegnare un campione del liquido utilizzato per il lavaggio. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Malathion [2]

Malathion

MP 043 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Malathion - Metodo GC-MS

ach31

60,00

≥ 300 ng/campione

Pads (α-cellulosa),

liquidi di lavaggio mani (etanolo)

Idem sopra

MEPE – La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]

Metalaxyl, penconazolo

MP 090 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Metalaxyl e Penconazolo - Metodo GC/MS

ach31

60,00

per singolo composto

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Met AAS – La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato

Arsenico, cadmio, cromo, indio, nichel, piombo, rame, zinco

MP 022 Rev0/2006

PADS, LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI E POLVERE DEPOSITATA:

Determinazione della concentrazione di metalli – Metodo AAS Zeeman

ach25

47,00

per singolo elemento

≥ 0.05 µg/campione

Polvere, pads, liquidi lavaggio mani

Per i pads consegnare 5 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 7 campioni. Per i lavaggi mani consegnare un campione del liquido utilizzato per il lavaggio.

Methomyl [2]

Methomyl

MP 016.7 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Methomyl - Metodo LC-MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Pads (α-cellulosa),

liquidi di lavaggio mani (etanolo)

Per i pads consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Per i lavaggi mani consegnare un campione del liquido utilizzato per il lavaggio. I campioni devono essere schermati dalla luce.


Metotrexate - 🙪


Metotrexate - 🙪

MP 176 2021 Ed 2 Rev. 3

GARZE IN TESSUTO NON TESSUTO (TNT): Determinazione della concentrazione di ciclofosfamide, ifosfamide, 5-fluorouracile e metotrexate - Metodo LC-MS/MS


ach37


65,00


> 2 ng/campione

Wipe test o pads in tessuto non tessuto (TNT)

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I pads possono essere quadrati x xxxxxxx e le aree devono essere comprese tra 4 e 20 cm2.

Gli wipe test sono umidificati con acqua deionizzata. I campioni devono essere schermati dalla luce.

MMZ – La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]

Mancozeb, maneb, zineb

MP 016.3 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di etilenbisditiocarbammati - Metodo LC/MS

ach30

92,00

per singolo composto

≥ 3 µg/campione

Pads (α-cellulosa),

liquidi di lavaggio mani (etanolo)

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Nicotina e Cotinina

Nicotina e Cotinina

MP 231 Rev0/2017

LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione della concentrazione di Cotinina e Nicotina - Metodo LC/MS

ach43

92,00

≥ 5 ng/ml

Liquidi di lavaggio mani (etanolo)

Consegnare un campione del liquido utilizzato per il lavaggio.

Organofosforici – La richiesta deve

specificare il nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato [2]


Clorpirifos metile, dimetoato, fenitrotion, ometoato, tolclofos metile

MP 016.1 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di esteri organofosforici - Metodo GC/MS o LC-MS


ach33

59,00

per singolo composto


≥ 300 ng/campione

Pads (α-cellulosa), liquidi di lavaggio mani (etanolo)


Idem sopra

Pirimetanil [2]

Pyrimetanil

MP 069 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Pyrimetanil - Metodo LC/MS

ach30

92,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Platino ICP - 🙪

Platino - 🙪

MP 107c 2022 Rev. 8

WIPE TEST O PADS IN TESSUTO NON TESSUTO (TNT):

Determinazione della concentrazione di platino - Metodo ICP-MS

ach26

65,00

Wipe ≥ 0.5 ng/campione Pad ≥ 0.1 ng/campione

Wipe test o pads in

tessuto non tessuto (TNT)

Consegnare 15 supporti di campionamento che non hanno campionato (bianchi dello stesso lotto dei campioni) ogni

100 campioni. Porre i singoli campioni in contenitori da almeno 30 ml. Gli wipe test sono umidificati con acqua ultrapura.

Procimidone [2]

Procymidone

MP 071 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di Procymidone - Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 300 ng/campione

Pads (α-cellulosa),

liquidi di lavaggio mani (etanolo)

Per i pads consegnare 7 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato. Per i lavaggi mani consegnare un campione del liquido utilizzato per il lavaggio. I campioni devono essere schermati dalla luce.

Propiconazolo [2]

Propiconazolo

MP 076 Rev0/2006

PADS E LIQUIDI DI LAVAGGIO DELLE MANI: Determinazione del contenuto di propiconazolo - Metodo GC/MS

ach31

60,00

≥ 300 ng/campione

Idem sopra

Idem sopra

Silice - La richiesta deve specificare il

nome delle sostanze da sottoporre ad analisi tra quelle riportate a lato

Quarzo, cristobalite

MP 023 Rev0/2006

MATERIALI: Determinazione della concentrazione di silice libera cristallina – Metodo in diffrattometria a raggi X

pef1

195,00

Quarzo 14 – 200 µg

Cristobalite 29 – 100 µg

Campione di materiale

Campioni omogenei del peso massimo di 50 grammi

Tallio

Tallio

MP 211 2019 Rev. 3

CAPELLI: Determinazione della concentrazione di Tallio – Metodo ICP/MS

toa53

65,00

≥ 0,100 ng/g

Capelli

Consegnare almeno 200 mg di campione


Taxolo


Taxolo

MP 176.1 2019 Rev. 0

GARZE IN TESSUTO NON TESSUTO (TNT): Determinazione della concentrazione di taxolo - Metodo LC-MS/MS


ach41


93,00


> 1 ng/campione

Wipe test o pads in tessuto non tessuto (TNT)

Consegnare 10 supporti di campionamento (stesso lotto dei campioni) che non hanno campionato ogni 40 campioni. I

pads possono essere quadrati x xxxxxxx e le aree devono essere comprese tra 4 e 20 cm2.

Gli wipe test sono umidificati con soluzione alcalina ottenuta aggiungendo a 2 L di acqua deionizzata 1 mL di NaOH 1,25M. I campioni devono essere schermati dalla luce.

ACQUE DESTINATE AL CONSUMO UMANO

Asbesto acqua - 🙪

Fibre di asbesto - 🙪

ISS.EAA.000:2015

pef6

521,00

-

-

Consegnare almeno 2 litri di acqua

XXXXX


Xxxxx - 🙪 [2]


Radon 222 - 🙪


UNI ISO 11665-4:2021 escl cap 6


afi5


33,00


100 - 6000 Bq/m^3


Rivelatore ad elettrete

I dosimetri per la misura vengono forniti dal Laboratorio.

I dosimetri sono materiale di consumo di proprietà dell’Azienda USL Toscana Sud Est che vengono dati in uso al cliente, è cura dello stesso la custodia e il buon mantenimento, in caso di smarrimento o danneggiamento saranno addebitati € 50,00 cadauno (costo netto del materiale).

Per altre informazioni preliminari vedere quanto descritto in fondo a questo documento nella parte dedicata a “INFORMAZIONI GENERALI SUL CAMPIONAMENTO ESEGUITO DAL CLIENTE”

[2] = La determinazione analitica prevede un contatto preliminare con il Laboratorio da effettuare prima dell'invio dei campioni di prova

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

segue Tabella: Analiti, Metodi di Prova e Tariffario



RISCHIO BIOLOGICO IN AMBI

ENTI DI V

ITA E DI LAV

ORO



Identificativo della prova di analisi

riportato nella ricevuta di accettazione - contratto

Analita/i corrispondenti all'identificativo

Metodo di prova

Codice

Tariffario Regionale

Tariffario

Regionale

€

Campo di applicazione

Matrice

Avvertenze

CBP 30

Conta Microrganismi a 30°C

MP 024 Rev0/2011

Superfici: Conta microrganismi a 30°C con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam2

17,00

> 0 ufc/piastra

Piastra a contatto

Prelievo non antecedente alle 24 ore prima del conferimento al Laboratorio, impiegando piastre trasportate a temperatura

compresa tra 1°C e 8°C.

CBP 22

Conta Microrganismi a 22°C

MP 186 Rev0/2015

Superfici: Conta microrganismi con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam2

17,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

CBP 37

Conta Microrganismi a 37°C

MP 186 Rev0/2015

Superfici: Conta microrganismi con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam2

17,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

STAPHPC

Conta Stafilococco aureo

MP 187 Rev0/2015

Superfici: Conta Stafilococco aureo con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

ENTPC

Conta Enterobacteriaceae

MP 188 Rev0/2015

Superfici: Conta Enterobacteriaceae con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

CTPC

Conta Coliformi

MP 189 Rev0/2015

Superfici: Conta Coliformi con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

ECPC

Conta Escherichia coli

MP 190 Rev0/2015

Superfici: Conta Escherichia coli con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

STREPTPC

Conta Streptococchi fecali

MP 191 Rev0/2015

Superfici: Conta Streptococchi fecali con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

PSPC

Conta Pseudomonas aeruginosa

MP 192 Rev0/2015

Superfici: Conta Pseudomonas aeruginosa con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

MPC

Conta miceti

MP 204 Rev0/2015

Superfici: Conta miceti con l’utilizzo di piastre a contatto 24 cm2

mam2

17,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

CBP37 C

Conta carica batterica a 37°C

MP 106 Rev1/2015

Aria: Conta carica batterica con campionamento passivo (Piastre a caduta)

mam3

17,00

> 0 ufc/piastra

Piastra di terreno

agarizzato

Prelievo non antecedente alle 24 ore prima del conferimento al Laboratorio, impiegando piastre trasportate a temperatura

compresa tra 1°C e 8°C.

CBP22 C

Conta carica batterica a 22°C

Idem sopra

mam3

17,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

CMP

Conta carica Micetica totale

MP 137 Rev0/2011

Aria: Conta carica Micetica totale con campionamento passivo (Piastre a caduta)

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

GNP

Conta Batteri Gram negativi totali

MP 145 Rev0/2011

Aria: Conta Batteri Gram negativi totali con campionamento passivo (Piastre a caduta)

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

PSP

Conta Pseudomonas aeruginosa

MP 147 Rev0/2011

Aria: Conta Pseudomonas aeruginosa con campionamento passivo (Piastre a caduta)

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

SALP

Ricerca Salmonella spp

MP 174 Rev0/2011

Aria: Ricerca Salmonella spp. con campionamento passivo (Piastre a caduta)

mam21

39,00

ricerca

Idem sopra

Idem sopra

STAPHP

Conta Stafilococchi spp.

MP 139 Rev0/2011

Aria: Xxxxx Xxxxxxxxxxxxx spp. con campionamento passivo (Piastre a caduta)

mam18

29,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

CBS 22

Conta carica batterica Psicrofila (22°C)

MP 064 Rev0/2011

Aria: Conta carica batterica Mesofila (37°C) e Psicrofila (22°C) con campionamento attivo

mam6

17,00

> 0 ufc/piastra

Piastra di terreno agarizzato

Prelievo non antecedente alle 24 ore prima del conferimento al Laboratorio, impiegando piastre trasportate a temperatura compresa tra 1°C e 8°C.

CBS 37

Conta carica batterica Mesofila (37°C)

MP 064 Rev0/2011

Aria: Conta carica batterica Mesofila (37°C) e Psicrofila (22°C) con campionamento attivo

mam5

17,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

CMS

Conta carica Micetica totale

MP 066 Rev0/2011

Aria: Conta carica Micetica totale con campionamento attivo

mam19

58,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

GNS

Conta Batteri Gram negativi totali

MP 088 Rev0/2011

Aria: Conta Batteri Gram negativi totali con campionamento attivo

mam19

58,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

SALS

Ricerca Salmonella spp

MP 099 Rev0/2011

Aria: Ricerca Salmonella spp. con campionamento attivo

mam16

79,00

ricerca

Idem sopra

Idem sopra

STAPHS

Conta Stafilococchi spp.

MP 068 Rev0/2011

Aria: Xxxxx Xxxxxxxxxxxxx spp. con campionamento attivo

mam19

58,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

STAPHAS

Conta Stafilococco aureo

MP 193 Rev0/2015

Aria: Xxxxx Xxxxxxxxxxxx aureo con campionamento attivo

mam19

58,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

CTS

Conta Coliformi

MP 194 Rev0/2015

Aria: Conta Coliformi con campionamento attivo

mam19

58,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

STREPS

Conta Streptococchi fecali

MP 198 Rev0/2015

Aria: Conta Streptococchi fecali con campionamento attivo

mam19

58,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

PSEUS

Conta Pseudomonas aeruginosa

MP 199 Rev0/2015

Aria: Conta Pseudomonas aeruginosa con campionamento attivo

mam19

58,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

CLOSTRS

Conta Clostridi solfito-riduttori

MP 200 Rev0/2015

Aria: Conta Clostridi solfito-riduttori con campionamento attivo

mam19

58,00

> 0 ufc/piastra

Idem sopra

Idem sopra

Spore

Ricerca spore vitali o non vitali

MP 184 Rev0/2014

Fiale contenenti spore per verifica processo di sterilizzazione: test di sterilità

mam22

33,00

ricerca

Fiala contenente spore

-

Legionelle in acqua ISO - 🙪

Conta Legionella specie - 🙪

ISO 11731: 2017 (escluso campionamento)

mam17

130,00

≥ 100 ufc/l

Acqua

Prelievo non antecedente a 24 ore prima del conferimento al Laboratorio. Volume ottimale 1000 ml. Bottiglia in vetro

scuro sterile condizionata, o in plastica monouso sterile condizionata e schermata dalla luce, trasportata a temperatura compresa tra 2°C e 8°C.

Legionella in aria

Conta Legionella Specie e Legionella pneumophila

MP 105 Rev0/2011

Aria: Conta Legionella spp. con campionamento attivo

mam13

130,00

> 0 ufc/piastra

Piastra di terreno

agarizzato

Prelievo non antecedente a 24 ore prima del conferimento al Laboratorio, impiegando piastre trasportate a temperatura

compresa tra 1°C e 8°C.

Legionelle in filtri

Ricerca Legionella Specie e Legionella pneumophila

MP 109 Rev0/2009

FILTRI: Ricerca, numerazione e tipizzazione di Legionella specie

mam13

130,00

ricerca

Filtri

condizionamento

Da mettere e consegnare al Laboratorio in busta sterile sigillata trasportata a temperatura compresa tra 2°C e 8°C.

Legionelle in depositi calcarei e tamponi

Ricerca Legionella Specie e Legionella pneumophila

MP 093 Rev0/2006

DEPOSITI CALCAREI e TAMPONI su BIOFILM: Ricerca qualitativa di Legionella specie e tipizzazione

mam13

130,00

ricerca

Residui calcarei/tamponi

Mettere in contenitori sterili contenenti acqua prelevata nello stesso punto dei depositi calcarei o acqua distillata/fisiologica sterile (tamponi). Trasportare a temperatura compresa tra 2°C e 8°C.

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

segue Tabella: Analiti, Metodi di Prova e Tariffario

SUPPORTI DA CAMPIONAMENTO SUPERFICI AMBIENTI A CONTAMINAZIONE CONTROLLATA

Identificativo della prova di analisi riportato nella ricevuta di accettazione - contratto

PST MIT

STREPTT

STAPHT - 🙪

CTT37 - 🙪

CBT - 🙪

ENTT - 🙪

ECT - 🙪

SARS-COV-2


Analita/i corrispondenti all'identificativo


Conta Pseudomonas aeruginosa Conta Miceti

Conta Streptococchi fecali

Conta Stafilococchi coagulasi positivi a 37°C (Staphylococcus aureus ed altre specie) - 🙪

Conta Coliformi a 37°C - 🙪

Conta microrganismi a 30°C - 🙪

Conta Enterobacteriaceae a 37°C - 🙪

Conta Escherichia coli beta-glucuronidasi positivi a 37°C - 🙪

Ricerca SARS-COV-2


Metodo di prova


MP 195 Rev8/2022

SUPPORTI DA CAMPIONAMENTO SUPERFICI AMBIENTI A CONTAMINAZIONE CONTROLLATA - TAMPONI AMBIENTALI: Conta

Pseudomonas aeruginosa, Miceti, Streptococchi fecali Idem sopra

Idem sopra

UNI EN 17141:2021 Annex E (escl campionamento) + UNI EN ISO 6888- 1:2021

UNI EN 17141:2021 Annex E (escl campionamento) + AFNOR BIO 12/20- 12/06

UNI EN 17141:2021 Annex E (escl campionamento) + UNI EN ISO 4833- 1:2022

UNI EN 17141:2021 Annex E (escl campionamento) + UNI EN ISO 21528-2:2017/EC 1:2018

UNI EN 17141:2021 Annex E (escl campionamento) + AFNOR BIO 12/19-12/06

UNI EN 17141:2021 ANNEX E (escl campionamento)

+ PCR LAMP (loop-mediated isothermal amplification)

Codice Tariffario Regionale


mam20


mam20 mam20

mam20 mam20 mam4 mam20 mam20 mam16

Tariffario Regionale

€


29,00


29,00

29,00

29,00


29,00


17,00


29,00


29,00


79,00


Campo di applicazione


≥ 100 ufc/tampone


≥ 100 ufc/tampone

≥ 100 ufc/tampone

≥ 100 ufc/tampone


≥ 10 ufc/xxxxxxx


≥ 10 ufc/xxxxxxx


≥ 10 ufc/xxxxxxx

≥ 10 ufc/tampone ricerca


Matrice


Tampone


Idem sopra Idem sopra

Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra


Avvertenze


Prelievo non antecedente alle 24 ore prima del conferimento al Laboratorio, impiegando tamponi immersi in idoneo terreno liquido di trasporto, trasportati a temperatura compresa tra 1°C e 8°C.


Idem sopra Idem sopra

Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra

Idem sopra

Prelievo non antecedente alle 24 ore prima del conferimento al Laboratorio, impiegando tamponi in rayon immersi in acqua distillata sterile, trasportati a temperatura compresa tra 2°C e 8°C.

SUPPORTI DA CAMPIONAMENTO SUPERFICI AMBIENTI DEL SETTORE ALIMENTARE

Il Laboratorio non accetta routinariamente campioni congelati. In caso di emergenza il cliente deve preventivamente contattare il Laboratorio prima di consegnare campioni congelati (a temperatura <-15°C o <-18°C) in modo da poter dimostrare che il recupero dei microrganismi bersaglio non è significativamente alterato con la matrice del campione in esame

terreno liquido di trasporto, trasportati a temperatura compresa tra 1°C e 8°C.

CBTA - 🙪 Conta Microrganismi a 30°C - 🙪 UNI EN ISO 4833-1:2022 mam4 17,00 ≥ 10 ufc/tampone Tampone Prelievo non antecedente alle 24 ore prima del conferimento al Laboratorio, impiegando tamponi immersi in idoneo

ENTTA - 🙪 Conta Enterobacteriaceae a 37°C - 🙪 UNI EN ISO 21528-2:2017/EC 1:2018 mam20 29,00 ≥ 10 ufc/tampone Idem sopra Idem sopra CTTA37 Conta Coliformi a 37°C ISO 18593:2018 (escluso cap. 7 e 8) + AFNOR BIO 12/20-12/06 mam20 29,00 ≥ 10 ufc/tampone Idem sopra Idem sopra ECTA - 🙪 Conta Escherichia coli beta-glucuronidasi positivi a 37°C - 🙪 ISO 18593:2018 (escluso cap. 7 e 8) + AFNOR BIO 12/19-12/06 mam20 29,00 ≥ 10 ufc/tampone Idem sopra Idem sopra LISTTA QUAL Ricerca Listeria monocytogenes ISO 18593:2018 (escluso cap. 7 e 8) + UNI EN ISO 11290–1:2017 mam12 39,00 ricerca Idem sopra Idem sopra

MP 182 Rev4/2022

PSTA


MITA


SALTA STAPHTA


STREPTTA

Conta Pseudomonas aeruginosa


Conta Miceti Ricerca Salmonella spp

Conta Stafilococchi coagulasi positivi a 37°C (Staphylococcus aureus ed altre specie)


Conta Streptococchi fecali

SUPPORTI DA CAMPIONAMENTO SUPERFICI AMBIENTI DEL SETTORE ALIMENTARE - TAMPONI AMBIENTALI: Conta Pseudomonas

aeruginosa

MP 142 Rev4/2022

SUPPORTI DA CAMPIONAMENTO SUPERFICI AMBIENTI DEL SETTORE ALIMENTARE - TAMPONI AMBIENTALI: Conta Miceti

ISO 18593:2018 (escluso cap. 7 e 8) + UNI EN ISO 6579-1:2017 (escl. cap.

9.5.6)

ISO 18593:2018 (escluso cap. 7 e 8) + UNI EN ISO 6888-1:2021

MP 092 Rev4/2022

SUPPORTI DA CAMPIONAMENTO SUPERFICI AMBIENTI DEL SET-

TORE ALIMENTARE - TAMPONI AMBIENTALI: Conta Streptococchi fe- cali

mam20


mam20


mam21 mam20


mam20

29,00


29,00


39,00


29,00


29,00

≥ 100 ufc/tampone


≥ 100 ufc/tampone ricerca


≥ 100 ufc/tampone


≥ 100 ufc/tampone

Idem sopra


Idem sopra


Idem sopra Idem sopra


Idem sopra

Idem sopra


Idem sopra


Idem sopra Idem sopra


Idem sopra

CBALE22

Conta Microrganismi vitali a 22°C

UNI EN ISO 6222:2001

mac41

17,00

≥ 1 ufc/1 ml

Acqua

CBALE37

Conta Microrganismi vitali a 37°C

UNI EN ISO 6222:2001

mac42

17,00

≥ 1 ufc/1 ml

Idem sopra

CT37ALE - 🙪

Conta Coliformi - 🙪

UNI EN ISO 9308-2:2014

mac44

20,00

≥ 1 MPN/100 ml

Idem sopra

ECALE

Conta Escherichia coli

UNI EN ISO 9308-2:2014

mac43

20,00

≥ 1 MPN/100 ml

Idem sopra

PSALE

Conta Pseudomonas aeruginosa

ISO 16266-2:2018

mac49

27,00

≥ 1 MPN/100 ml

Idem sopra

STAPHALE

Conta Stafilococchi patogeni

Rapporti ISTISAN 2007/5: metodo ISS A 018A

mac47

27,00

≥ 1 ufc/100 ml

Idem sopra

STAPHspALE

Conta Stafilococchi specie

MP 219 Rev0/2017

mac47

27,00

≥ 1 ufc/100 ml

Idem sopra

ACQUA LAVAENDOSCOPI E LIQUIDO CANALI ENDOSCOPI


Acqua lavaendoscopi: conta Stafilococchi specie


Prelievo non antecedente alle 24 ore prima del conferimento al Laboratorio, volume ottimale 1000 ml. Bottiglia sterile monouso condizionata. Trasporto a temperatura compresa tra 2°C e 8°C.

Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra

Idem sopra

ENTALE


Legionelle in acqua LE ISO - 🙪


CBACE ENTACE STAPHACE STAPHspACE PSACE

G(-)NFACE ENTACE

Conta Enterococchi


Conta Legionella specie - 🙪


Conta Microrganismi a 30°C Ricerca Enterobacteriaceae a 37°C Ricerca Stafilococchi patogeni Ricerca Stafilococchi specie Ricerca Pseudomonas aeruginosa

Ricerca Gram negativi non fermentanti Ricerca Enterococchi

UNI EN ISO 7899-2:2003


ISO 11731:2017 (escluso campionamento)


MP 221 Rev0/2017

Liquido canali endoscopi: conta microrganismi a 30°C MP 222 Rev0/2017

Liquido canali endoscopi: ricerca Enterobacteriaceae a 37°C

MP 224 Rev0/2017

Liquido canali endoscopi: ricerca Stafilococchi patogeni MP 225 Rev0/2017

Liquido canali endoscopi: ricerca Stafilococchi specie

MP 226 Rev0/2017

Liquido canali endoscopi: ricerca Pseudomonas aeruginosa MP 227 Rev0/2017

Liquido canali endoscopi: ricerca Gram negativi non fermentanti

MP 223 Rev0/2017

Liquido canali endoscopi: ricerca Enterococchi

mac46


mac48


mac52 mac53 mac54 mac55 mac56 mac57 mac58

20,00


130,00


17,00


20,00


27,00


27,00


27,00


27,00


20,00

≥ 1 ufc/100 ml


≥ 100 ufc/l


≥ 1 ufc/1 ml ricerca ricerca ricerca ricerca ricerca ricerca

Idem sopra


Idem sopra


Liquido canali Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra

Idem sopra

Prelievo non antecedente a 24 ore prima del conferimento al Laboratorio. Volume ottimale 1000 ml. Bottiglia in vetro scuro sterile condizionata, o in plastica monouso sterile condizionata e schermata dalla luce, trasportata a temperatura compresa tra 2°C e 8°C.

Prelievo non antecedente alle 24 ore prima del conferimento al Laboratorio, volume ottimale 20 ml. Contenitore sterile monouso trasportato a temperatura compresa tra 2°C e 8°C.

Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra Idem sopra

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx

INFORMAZIONI GENERALI SUL CAMPIONAMENTO ESEGUITO DAL CLIENTE

Premesso che gli aspetti specifici relativi al campionamento delle varie matrici da sottoporre ad analisi per la determinazione di inquinanti chimici e microbiologici non rientrano nelle attività svolte dal Laboratorio e soggette ad accreditamento, si riportano di seguito alcune indicazioni utili per il Cliente in aggiunta a quelle già fornite nella colonna “Avvertenze” delle tabelle sopra riportate. Va sottolineato che la procedura di campionamento-conservazione-trasporto da seguire è di fondamentale importanza al fine di assicurare, da un lato, la corretta esecuzione della prova e dall’altro la stabilità dei campioni fino alla loro consegna al Laboratorio per l'analisi. Non essendo la fase di campionamento eseguita dal Laboratorio, quest’ultimo non ne è responsabile ma il campionamento fa necessariamente parte dello schema ciclico “Plan, Do, Check, Act” riportato nelle norme internazionali per la gestione delle attività “in qualità”: l’approccio al sistema ciclico inizia dal check (necessità di una attività di monitoraggio o controllo), finalizzato all’analisi delle condizioni in essere; si passa, quindi, alle decisioni da assumere (act), alla pianificazione (plan), all’attuazione (do) e nuovamente alle verifica (check) dell’efficacia delle decisioni assunte. Il Laboratorio può fornire su richiesta indicazioni aggiuntive rispetto a quelle riportate sinteticamente nella tabella seguente.

Tutti i campioni devono essere etichettati in modo chiaro con tutte le indicazioni necessarie alla loro identificazione. La richiesta analisi deve essere eseguita conformemente a quanto riportato nei vari moduli disponibili sul sito web del Laboratorio ( xxxx://xxx.xxxxxxxxx.xxxxxxx.xx/xxxxx.xxx/xxxxxxxxxxx-xxxxxx- pubblica). Qualora il campionamento sia eseguito in riferimento a norme specifiche, il Cliente deve dichiarare nella richiesta di aver ottemperato a quanto prescritto.


Matrice

Tipologia di parametro o gruppo di parametri

Informazioni per il campionamento

Acqua

Amianto

Vengono accettati soltanto campioni istituzionali per il monitoraggio della presenza di amianto nelle acque condottate ad uso potabile secondo quanto riportato nel metodo indicato e già a disposizione delle strutture regionali

deputate al campionamento. Non sono accettati campioni provenienti da privati.


Acqua e altre matrici


Legionella spp.

La Legionella viene ricercata nell’ambiente idrico artificiale (impianti idrici, impianti di climatizzazione, idromassaggi, apparecchiature per respirazione assistita e per aerosol, piscine, fontane, acque industriali, etc.) limitando i prelievi ai punti che maggiormente possono essere critici a seconda della struttura dell’impianto.

Il campionamento dovrebbe essere effettuato in riferimento alle “Linee Guida per la prevenzione ed il controllo della Legionellosi”. Allegato 3: campionamento di matrici ambientali per la ricerca di Legionella (2015). Il

documento, scaricabile dal web all'indirizzo xxxx://xxx.xxx.xx/xxxxxx/xxx0/xxxx/X_00_xxxxxxxxxxxxx_0000.xxx può essere anche richiesto al Laboratorio.


Acqua lava-endoscopi e liquido canali endoscopi


Vari microrganismi indicatori

Il campionamento dovrebbe essere effettuato in riferimento al documento “Il reprocessing in endoscopia digestiva: criticità e strumenti per la sicurezza del percorso”. Il documento, scaricabile dal web all'indirizzo xxxxx://xxx.xxx.xxxxxxx.xx/xxxxx/xxxxxxxxxxxxx/Xxxxxx/0000/xxx_xxx_00_0000_xx.xxx può essere anche richiesto al Laboratorio.

Alcune specifiche di campionamento alle quali attenersi sono riportate di seguito.

Acqua lavaendoscopi: i campioni vengono prelevati in idonei contenitori sterili, addizionati con tiosolfato di sodio al 10% (nel caso di acque clorate) da personale opportunamente formato. Liquido canali endoscopi: i campioni vengono prelevati in idonei contenitori sterili utilizzando di solito soluzione fisiologica.


Aria


Inquinanti microbiologici - campionamento attivo (piastre di terreno agarizzato)

Il campionamento dovrebbe essere effettuato in riferimento alle Linee Guida INAIL “Il monitoraggio microbiologico negli ambienti di lavoro. Campionamento e analisi” Edizione 2010. Il documento, scaricabile dal web all'indirizzo xxxxx://xxx.xxxxx.xx/xx/xxxxxxxx/xxxx/xxx-xx-xxxxxxxxxxxx-xxxxxxxxxxxxxx-xxxxx-xxxxxxxx-xxxxxxxxx.xxx può essere anche richiesto al Laboratorio.

Alcune specifiche sono riportate di seguito.

Il sistema attivo di campionamento SAS “Surface Air System” è capace di aspirare volumi predeterminati di aria convogliandoli su un terreno di coltura liquido o solido, di conseguenza i microrganismi presenti nell’aria campionata aderiscono al terreno e, dopo un adeguato periodo di incubazione, danno origine a colonie visibili a occhio nudo che si possono numerare e, dopo isolamento, identificare. Questo metodo di campionamento ha il vantaggio di permettere l’aspirazione di grandi volumi di aria confinata, minimizzando le differenze di distribuzione dei batteri dovute alle correnti d’aria, alla temperatura e alle dimensioni degli aggregati aerodispersi. Il sistema di campionamento attivo consente di variare i volumi di aspirazione dell’aria in funzione dei livelli di inquinamento microbico presunti in relazione al tipo di agente microbico ricercato e alla zona di campionamento. Il terreno agarizzato viene scelto in base al tipo di microrganismo da identificare. Per ogni microrganismo ricercato, in ogni punto di prelievo, è preferibile effettuare un campionamento in triplo al fine di ottenere, calcolando la media dei tre risultati, una stima più accurata della carica microbica. Inoltre, ripetere il campionamento tre volte permette di individuare eventuali valori eccezionali, presumibilmente dovuti a condizioni transitorie imprevedibili (correnti d’aria, passaggio di persone ecc.). Nel luoghi di lavoro particolarmente contaminati da agenti biologici, l’ordine esecutivo dei campionamenti dovrebbe essere scelto sulla base della presunta contaminazione delle zone campionate partendo dalla zona meno contaminata per finire con quella più contaminata. I campionamenti sono di solito accompagnati da una campionamento di “bianco” in modo da ottenere un dato sulla normale contaminazione ambientale della zona al fine di poter effettuare un confronto con la contaminazione delle aree interessate. Per ogni punto di prelievo, dovrebbero essere annotate le condizioni microclimatiche al momento del campionamento (temperatura dell'aria, umidità relativa, velocità dell'aria).

Prima di inserire nel sistema di campionamento le piastre di terreno agarizzato è necessario indossare guanti sterili monouso in modo da evitare contaminazioni. I punti di prelievo sono decisi a priori; il personale dispone quindi di un elenco dettagliato dei vari punti dell'ambiente scelto sui quali effettuare il campionamento.

Prima dell'inizio di qualsiasi attività è necessario sterilizzare la testata in metallo dell'apparecchiatura in modo da eliminare residui microbici. Fra un campionamento e il successivo può essere utilizzato idoneo disinfettante. Occorre particolare attenzione a non contaminare le piastre con le mani o facendole venire a contatto con altri oggetti o superficie estranee al punto prelievo indicato.

Per le sale operatorie il documento di riferimento è “Linee guida sugli standard di sicurezza e di igiene del lavoro nel reparto operatorio), scaricabile dal web all'indirizzo xxxx://xxx.xxxxx-xxx.xx/xxx/Xxxxxxxxxx/Xxxxxxx

%20chimico%20cancerogeno/ISPESL_linee_guida_sicurezza_Sale_Operatorie.pdf può essere anche richiesto al Laboratorio.


Aria


Inquinanti microbiologici – campionamento passivo (piastre a caduta)

Il campionamento dovrebbe essere effettuato in riferimento alle Linee Guida INAIL “Il monitoraggio microbiologico negli ambienti di lavoro. Campionamento e analisi” Edizione 2010. Il documento, scaricabile dal web all'indirizzo xxxxx://xxx.xxxxx.xx/xx/xxxxxxxx/xxxx/xxx-xx-xxxxxxxxxxxx-xxxxxxxxxxxxxx-xxxxx-xxxxxxxx-xxxxxxxxx.xxx può essere anche richiesto al Laboratorio.

Nel campionamento passivo si espongono nell’ambiente in esame, per opportuni intervalli di tempo, piastre contenenti idoneo terreno di coltura: su di esse si raccolgono per sedimentazione i microrganismi veicolati da particelle solide o liquide sospese nell’aria. L’efficienza di raccolta dipende dalle caratteristiche aerodinamiche delle particelle e dal grado di ventilazione dell’ambiente. Il metodo maggiormente utilizzato a livello igienistico è l’Indice Microbico Aria (IMA), il quale esprime il grado di inquinamento microbiologico dell’aria come numero di unità formanti colonia (UFC) che si contano in una piastra Petri di 9 cm di diametro, contenente agar nutriente (TSA o PCA), lasciata aperta nell’ambiente per un’ora, ad un metro da terra e ad un metro da ogni ostacolo fisico rilevante. Il metodo può essere ulteriormente standardizzato: il rischio di contaminazione ambientale indotto dalla presenza di un operatore può essere ridotto utilizzando uno stativo a cannocchiale che, mediante un programma elettronico, apre e chiude la piastra automaticamente per tempi predefiniti. L’utilizzo di piastre di sedimentazione, rispetto al campionamento volumetrico dell’aria, presenta il vantaggio di essere più semplice ed economico. Esso è particolarmente vantaggioso per il monitoraggio dell’inquinamento microbiologico in una camera operatoria, in una camera asettica o in una azienda alimentare, in quanto permette di avere una stima diretta del numero di microrganismi che si depositano sugli oggetti o sugli alimenti presenti in questi luoghi. I campionatori volumetrici, invece, misurando il numero totale di microrganismi vitali presenti nell’aria, forniscono solo un indice indiretto della probabile contaminazione di oggetti o prodotti. Le piastre a sedimentazione, infine, possono essere più facilmente posizionate in vicinanza delle zone di possibile inquinamento.

II metodo passivo presenta tuttavia diversi svantaggi: non è quantitativo, non permette di correlare il numero di microrganismi a un volume noto di aria ed ha una bassissima sensibilità. E’ dimostrato, infatti, che esso rileva una

carica ambientale notevolmente minore rispetto a quella misurabile con il campionamento attivo effettuato con il SAS. L’efficienza di questo metodo viene influenzata da fattori non sempre riproducibili e controllabili, quali:

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx



distribuzione non uniforme dei microrganismi nell’aria, dimensione dei microrganismi e di conseguenza diversa velocità di sedimentazione delle particelle vitali, temperatura dell’ambiente, ridotti volumi di aria campionati.


Aria


Aerosol (polveri, fibre, fumi, nebbie) ed inquinanti adesi sul particolato aerodisperso con campionamento attivo eseguito per filtrazione (metalli, idrocarburi policiclici aromatici, fitofarmaci, chemioterapici antiblastici, etc.)

Il preselettore utilizzato deve essere in grado di prelevare la frazione granulometrica del particolato aerodisperso che si vuole campionare (frazione inalabile, frazione toracica, frazione respirabile, altre granulometrie). Il filtro/substrato da utilizzare, che completa il sistema di campionamento, è inserito nel titolo del metodo di prova riportato nelle tabelle descrittive dei singoli analiti determinati dal Laboratorio. I sistemi di campionamento attivo richiedono l’utilizzo di un sistema di movimento forzato dell’aria (pompa), sul quale deve essere impostato un flusso di campionamento adeguato al preselettore utilizzato. Le pompe devono essere tarate per il flusso di campionamento prima del loro utilizzo; è auspicabile che al termine del campionamento venga controllato il flusso della pompa in modo da verificare eventuali discostamenti dalla taratura iniziale.

Dopo il campionamento le membrane filtranti/substrati vengono di solito rimosse/i dai preselettori utilizzati per essere riposte in un contenitore in plastica (portamembrane). Durante il trasporto è importante fare in modo che le membrane non subiscano danni, non siano soggette ad urti e non si capovolgano per evitare la perdita di materiale depositato sul filtro. Nel caso in cui la determinazione dell'inquinante sia eseguita per via ponderale è necessario effettuare la pesata nelle stesse condizioni prima e dopo il campionamento: la pesata iniziale (e finale) può riguardare la sola membrana/substrato oppure la membrana già inserita nel preselettore (esempio preselettore IOM per

particolato inalabile); nel secondo caso al termine del campionamento la membrana/substrato non deve essere rimossa dal preselettore che deve essere consegnato integralmente al Laboratorio.


Aria


Vapori - campionamento attivo o passivo

Durante il campionamento (inizio e fine campionamento) devono essere monitorate la temperatura e la pressione con lo scopo di correggere i volumi campionati (campionamento attivo) o la portata equivalente (campionamento passivo) alle condizioni di riferimento. I volumi campionati e la portata equivalente sono necessari per il calcolo della concentrazione aerodispersa. E' auspicabile anche la misura dell'umidità ambientale per verificare se il valore riscontrato cade all'interno del range raccomandato per i vari tipi di inquinanti nelle brochure che accompagnano la commercializzazione dei campionatori passivi.

Nel caso di campionamento attivo, se le fiale sono divise in due sezioni (front e back) il Laboratorio provvederà ad eseguire analisi separata delle due sezioni per verificare situazioni di sfondamento (breackthrough): in pratica se nella parte back della fiala si riscontra una quantità di inquinante superiore al 10% della quantità riscontrata nella parte front il campionamento non è andato a buon fine perché si ipotizzano perdite di inquinante, viceversa se nella parte back della fiala si riscontra una quantità di inquinante inferiore al 10% della quantità riscontrata nella parte front, il calcolo della concentrazione aerodispersa verrà fatto considerando la somma delle quantità riscontrate nella parte front e nella parte back della fiala.

Nel caso di campionamento con sistema diffusivo il Laboratorio determina il Limite di quantificazione (LoQ) analitico (estremo inferiore del campo di applicazione) e adotta come estremo superiore del campo di applicazione il massimo del range di linearità della taratura stabilito in fase di validazione del metodo. Il produttore del sistema di campionamento dichiara un intervallo di linearità superiore che tiene conto della capacità di cattura del sistema,

pertanto campioni con concentrazione superiore al massimo del campo di applicazione ma che rientrano nel range di linearità dichiarato dal produttore sono analizzati previa diluizione.


Superfici


Inquinanti microbiologici prelevati con tamponi

Il campionamento dovrebbe essere effettuato in riferimento alle Linee Guida INAIL “Il monitoraggio microbiologico negli ambienti di lavoro. Campionamento e analisi” Edizione 2010 e al documento INAIL “La contaminazione microbiologica delle superfici negli ambienti lavorativi” Edizione 2017. I documenti sono scaricabili dal web rispettivamente agli indirizzi xxxxx://xxx.xxxxx.xx/xx/xxxxxxxx/xxxx/xxx-xx-xxxxxxxxxxxx- microbiologico-negli-ambienti-lavoropdf.pdf e xxxxx://xxx.xxxxx.xx/xx/xxxxxxxx/xxxx/xxx-xxxxx-xx-xxxxxxxxxxxxxx-xxxxxxxxxxxxxx-xxxxx-xxxxxxxxx.xxx o in alternativa richiesti al Laboratorio.

In particolari situazioni, ad esempio nel caso in cui le superfici da monitorare siano bagnate, irregolari o non facilmente accessibili, può essere necessario l’utilizzo di tamponi o di membrane di nitrocellulosa, anziché di piastre. Il tampone, previo inumidimento con liquido di trasporto, viene passato sulla superficie da campionare e posto nel suo contenitore immerso in liquido di trasporto per i successivi passaggi. Il campionamento può essere eseguito con mascherina sterile di superficie 10x10 cm (100 cm2) o senza mascherina. I campioni raccolti vengono maneggiati con l'uso di guanti sterili al fine di evitare contaminazioni fortuite da parte dell'operatore.

In aggiunta ai documenti riportati sopra, per le sale operatorie un ulteriore documento di riferimento è “Linee guida sugli standard di sicurezza e di igiene del lavoro nel reparto operatorio” (xxxx://xxx.xxxxx-

xxx.xx/xxx/Xxxxxxxxxx/Xxxxxxx%00xxxxxxx%00xxxxxxxxxxx/XXXXXX_xxxxx_xxxxx_xxxxxxxxx_Xxxx_Xxxxxxxxxx.xxx) che può essere anche richiesto al Laboratorio.


Superfici


Inquinanti microbiologici prelevati con piastre a contatto

Il campionamento dovrebbe essere effettuato in riferimento alle Linee Guida INAIL “Il monitoraggio microbiologico negli ambienti di lavoro. Campionamento e analisi” Edizione 2010 e al documento INAIL “La contaminazione microbiologica delle superfici negli ambienti lavorativi” Edizione 2017. I documenti sono scaricabili dal web rispettivamente agli indirizzi xxxxx://xxx.xxxxx.xx/xx/xxxxxxxx/xxxx/xxx-xx-xxxxxxxxxxxx- microbiologico-negli-ambienti-lavoropdf.pdf e xxxxx://xxx.xxxxx.xx/xx/xxxxxxxx/xxxx/xxx-xxxxx-xx-xxxxxxxxxxxxxx-xxxxxxxxxxxxxx-xxxxx-xxxxxxxxx.xxx o in alternativa richiesti al Laboratorio.

Le piastre a contatto vengono utilizzate per la valutazione della contaminazione delle superfici, causata dalla deposizione del bioaerosol sospeso nell’aria e dal contatto con l’uomo o materiali contaminati. Tali piastre Xxxxx sono dotate di un terreno agarizzato per la crescita microbica con menisco convesso (di poco sporgente dalla piastra stessa) in modo da consentire il contatto con le superfici da sottoporre ad esame. I campionamenti devono essere eseguiti indossando guanti sterili monouso per evitare contaminazioni dei campioni da parte dell’operatore. L’agar sporgente dalle piastre Xxxxx viene appoggiato sulle superfici da monitorare esercitando una lieve pressione per 10 secondi. Possono essere effettuati campionamenti in triplo, in modo da ottenere dati di contaminazione di tre punti significativi per ogni superficie campionata e valutare i livelli medi di contaminazione. I punti prelievo sono decisi a priori; è necessario quindi disporre di un elenco dettagliato dei vari punti dell'ambiente scelto sui quali effettuare il campionamento.

Occorre particolare attenzione a non contaminare le piastre con le mani o facendole venire a contatto con altri oggetti o superficie estranei al punto prelievo indicato; a tal fine è necessario l'uso di guanti sterili.

In aggiunta ai documenti riportati sopra, per le sale operatorie un ulteriore documento di riferimento è “Linee guida sugli standard di sicurezza e di igiene del lavoro nel reparto operatorio” (xxxx://xxx.xxxxx- xxx.xx/xxx/Xxxxxxxxxx/Xxxxxxx%00xxxxxxx%00xxxxxxxxxxx/XXXXXX_xxxxx_xxxxx_xxxxxxxxx_Xxxx_Xxxxxxxxxx.xxx) che può essere anche richiesto al Laboratorio.

Superfici

Inquinanti chimici prelevati tramite wipe test (chemioterapici antiblastici, idrocarburi policiclici aromatici, fitofarmaci, etc.)

Le garze di tessuto non tessuto (TNT) non sterili umidificate con apposito liquido (diverso a seconda del composto da determinare come indicato nella colonna “Avvertenze” nella tabella relativa ai singoli analiti) vengono preparate secondo le seguenti modalità. I pezzi di TNT, tutti della stessa dimensione (10x10 cm), sono posti in un contenitore idoneo (metallo, vetro, plastica) e addizionati di solvente in eccesso. Dopo una notte di contatto, il liquido viene scolato mentre le garze bagnate vengono lasciate all’interno del contenitore. Dopo chiusura con tappo idoneo il contenitore non viene più aperto fino al momento del campionamento. I materiali di campionamento possono essere preparati in Laboratorio ed inviati a coloro che intendono eseguire il campionamento.

La cornice di dimensioni definite (quadrato di 10 cm di lato o rettangolo di varie dimensioni) e materiale idoneo (plastica, legno, metallo, etc.), deve essere preparata prima dell’esecuzione del campionamento e può essere riutilizzata ogni volta previa decontaminazione se necessaria. La cornice viene appoggiata sulla superficie (pavimento o altro) nella posizione da campionare. Due strati di garza umidificata vengono estratti dal contenitore con pinzette pulite e utilizzati per strofinare l’area interna alla cornice. Le operazioni di campionamento devono essere eseguite sempre con le stesse modalità esercitando una decisa pressione e ripiegando il tampone dopo ogni passaggio. Il NIOSH (National Institute for Occupational Safety and Health) consiglia di procedere a strofinare l'area delimitata dalla cornice prima in senso orizzontale, poi in senso verticale e infine lungo il perimetro. Dopo il campionamento la garza viene posta in un contenitore di materiale idoneo (vetro o plastica) di piccole dimensioni (contenitore da 50 ml). Nel foglio di campionamento deve essere annotata la superficie (cm 2) strofinata in modo che i risultati possano essere espressi non solo come quantitativo assoluto nel campione ma anche come quantità/cm 2 di superficie campionata. Nel caso di superfici non piane o per le quali sia difficile usare la cornice deve essere stimata la superficie strofinata. In caso contrario il risultato sarà espresso solo come valore assoluto nel campione. I risultati dell’analisi saranno espressi in ng o µg di inquinante/campione oltre che in pg/ng/µg per cm 2 di superficie campionata, pertanto, ogni campione dovrà essere accompagnato dalla informazione sulla superficie strofinata. Tale superficie è determinata dall’area interna alla cornice, nel caso di utilizzo di quest’ultima, in caso

contrario, come già detto, deve essere stimata da chi esegue il campionamento.

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx



Alcuni documenti di riferimento sono scaricabili dai seguenti siti web e disponibili in Laboratorio:

• xxxxx://xxx.xxxx.xxx/xxx/xxxx/xxxxxxx/xxxxxxxxxxxxxxx/xxxxxxxxxxxxxxx.xxx

• xxxxx://xxx.xxxxxxxx.xxx/xxxxxxxxx/xxxx/Xxxx_Xxxx_Xxxxxxxx_0_00_0000.0_000000_0.xxx

Per i chemioterapici antiblastici: possono essere determinati nello stesso campione 5-fluorouracile, ciclofosfamide, ifosfamide e taxolo; vengono determinati singolarmente azacitidina, metrotrexate e platino.


Campioni cutanei


Inquinanti chimici prelevati a livello cutaneo (chemioterapici antiblastici, idrocarburi policiclici aromatici, fitofarmaci, etc.)

• Pad: il numero, la posizione cutanea e la collocazione (a contatto con la pelle, sopra agli indumenti, sopra ai dispositivi di protezione individuale) deve essere scelta a cura del Cliente in base alla strategia di valutazione. I pad collocati sul viso possono avere una dimensione inferiore rispetto a quelli collocati nelle altre zone del corpo. I pad devono essere essere attaccati alla superficie cutanea o sulla superficie esterna di indumenti o DPI tramite nastro adesivo. Al termine del periodo di esposizione il nastro adesivo viene rimosso e i singoli pad vengono collocati in altrettante capsule di Petri vuote.

• Liquidi di lavaggio delle mani: 150 ml di etanolo di 95 gradi sono lentamente versati sulle mani dell’operatore, il quale è invitato a sfregare bene, e raccolti in una vaschetta di alluminio usa e getta. Al termine l’operatore deve mantenere le mani ed in particolare le unghie a bagno nella soluzione alcolica per 30 secondi. La procedura di lavaggio viene di solito eseguita, all'inizio e alla fine dell'operazione da controllare e i due liquidi sono raccolti in contenitori diversi o nello stesso contenitore a seconda dello scopo dell'indagine.

• Wipe test cutanei: le garze di idoneo materiale non sterili umidificate con apposito liquido (diverso a seconda del composto da determinare come indicato nella colonna “Avvertenze” nella tabella relativa ai singoli

analiti) vengono preparate secondo le seguenti modalità. I pezzi di TNT, tutti della stessa dimensione (10x10 cm), sono posti in un contenitore idoneo (metallo, vetro, plastica) e addizionati di solvente in eccesso. Dopo una notte di contatto, il liquido viene scolato mentre le garze bagnate vengono lasciate all’interno del contenitore. Dopo chiusura con tappo idoneo il contenitore non viene più aperto fino al momento del campionamento. I materiali di campionamento possono essere preparati in Laboratorio ed inviati a coloro che intendono eseguire il campionamento. La cornice di dimensioni definite (quadrato di 10 cm di lato o rettangolo di varie dimensioni) e materiale idoneo (plastica, legno, metallo, etc.), deve essere preparata prima dell’esecuzione del campionamento e può essere riutilizzata ogni volta previa decontaminazione se necessaria. La cornice viene appoggiata sulla zona di cute da campionare (viso, mani o altra) nella posizione da campionare. Due strati di garza umidificata vengono estratti dal contenitore con pinzette pulite e utilizzati per strofinare l’area interna alla cornice. Le operazioni di campionamento devono essere eseguite sempre con le stesse modalità esercitando una decisa pressione e ripiegando il tampone dopo ogni passaggio. Il NIOSH (National Institute for Occupational Safety and Health) consiglia di procedere a strofinare l'area delimitata dalla cornice prima in senso orizzontale, poi in senso verticale e infine lungo il perimetro. Dopo il campionamento la garza viene posta in un contenitore di materiale idoneo (vetro o plastica) di piccole dimensioni (contenitore da 50 ml). Nel foglio di campionamento deve essere annotata la superficie (cm2) strofinata in modo che i risultati possano essere espressi non solo come quantitativo assoluto nel campione ma anche come quantità/cm2 di superficie campionata. I risultati dell’analisi saranno espressi in ng o µg di inquinante/campione oltre che in pg/ng/µg per cm2 di superficie campionata, pertanto, ogni campione dovrà essere accompagnato dalla informazione sulla superficie strofinata. Tale superficie è determinata dall’area interna alla cornice, nel caso di utilizzo di quest’ultima, in caso contrario, come già detto, deve essere stimata da chi esegue il campionamento.


Urina


Inquinanti chimici tal quali non volatili (metalli) o metaboliti non volatili di inquinanti chimici (fitofarmaci, idrocarburi policiclici aromatici, solventi)

Prima della minzione, è necessario un accurato lavaggio delle mani con acqua e sapone. I contenitori devono essere sterili e in confezione singola (bustina sigillata per evitare contaminazioni esterne), oppure precedentemente lavati con acido nitrico diluito allo 0,5%, quindi sciacquati con acqua deionizzata e mantenuti chiusi fino al momento della raccolta del campione. Dopo la raccolta del campione, il contenitore deve essere immediatamente chiuso. Se i campioni sono consegnati dopo 24 ore dal prelievo devono essere congelati. Se il cliente desidera che il dato relativo alla prova venga corretto per la creatininuria è necessario venga consegnata una provetta in plastica contenente 10 ml di urina (la determinazione della creatinina urinaria viene eseguita da altro Laboratorio). Qualora il campione di urina sia riferito alle 24 ore o a un diverso definito periodo il cliente deve indicare il

volume di urina escreto nel periodo se desidera che il dato sia espresso come valore assoluto nel periodo di raccolta del campione.


Urina


Inquinanti chimici tal quali o metaboliti, volatili (solventi, anestetici)

La minzione deve essere eseguita in un ambiente non contaminato, ed esempio lontano da zone di produzione dove vengono utilizzate le sostanze da determinare. La raccolta del campione deve avvenire in contenitori ermeticamente chiudibili utilizzando una delle seguenti due modalità: 1 - utilizzo di contenitori da circa 40 ml ermeticamente chiudibili con tappo a vite: in questo caso la minzione può avvenire direttamente nel contenitore che dovrà essere completamente riempito di urina e chiuso subito dopo la raccolta; 2 – utilizzo di barattoli di plastica per eseguire la minzione e trasferimento immediato di una aliquota in un contenitore ermeticamente chiuso: in una vial da 20 ml, precaricata con 3.5 g di cloruro di sodio, inserire tramite siringa l'aliquota di urina (10 ml), inserendo un ago per far defluire la sovrapressione. Dopo il prelievo il campione deve essere refrigerato (non

congelato). Le vial precaricate ed i contenitori ermeticamente chiudibili, possono essere richiesti telefonicamente al Laboratorio.


Sangue


Tutti gli analiti determinati

Se non specificamente indicato nella colonna “Avvertenze” per i singoli analiti, l'anticoagulante può essere rappresentato da EDTA, citrato, litio- o sodio-eparina. I campioni in fase di prelievo devono essere agitati ripetutamente ad evitare il formarsi di coaguli.

Vengono determinati nel sangue i seguenti metalli: Piombo, Cadmio, Cromo, Cobalto, Tallio.


Siero


Tutti gli analiti determinati

Dopo il prelievo con le modalità già indicate nella colonna “Avvertenze” il campione dovrebbe essere preferibilmente centrifugato in modo da poter travasare il siero in una ulteriore provetta. In caso di impossibilità ad eseguire l'operazione la centrifugazione viene eseguita in Laboratorio.

Vengono determinati nel siero i seguenti metalli: Piombo, Cadmio, Cromo, Cobalto, Manganese, Tallio.


Materiali massivi


Amianto

Possono pervenire al Laboratorio campioni di materiali vari (campioni massivi, polveri sedimentate, materiale friabile) per la determinazione della presenza/concentrazione di fibre di amianto (analisi qualitativa e quantitativa) con tecniche a diversa sensibilità e specificità (microscopia ottica o microscopia elettronica). Non vengono accettati campioni finalizzati alla caratterizzazione come rifiuto. Altre informazioni utili al campionamento sono già

fornite nella colonna “Avvertenze” delle tabelle sopra riportate.


Capelli


Tallio

I capelli sono in grado di rilevare esposizioni a medio e lungo termine. In funzione della velocità di crescita mensile (circa un centimetro), riflettono l’esposizione temporale all’inquinante nel corso dei mesi o addirittura anni. La concentrazione di metalli vicino alla cute può essere più elevata o più bassa rispetto alle lunghezze a seconda del tempo intercorso dal momento dell’esposizione, rispetto alla crescita del capello. Le principali criticità legate all’uso di questa matrice biologica sono la possibilità di contaminazione esterna (deposizione del particolato atmosferico, uso di shampoo, balsami, tinte) e le differenze nel risultato create dalla regione di prelievo del capello. E' consigliabile che il campione sia raccolto in quantità di alcune centinaia di milligrammi (200-400 mg) preferibilmente a livello della nuca, il più vicino possibile al cuoio capelluto con l’ausilio di forbici in acciaio inox; in caso

di consegna di un quantitativo in peso inferiore a 200 mg il Laboratorio ricalcolerà il limite di quantificazione in base al peso disponibile.

Xxxx

Xxxxx

QUADRO NORMATIVO

Il Decreto Legislativo 31 luglio 2020, n.101, attuazione della Direttiva 2013/59/Euratom è un testo che riordina e compatta la legislazione precedente, abrogando espressamente alcune disposizioni precedenti (i Decreti Legislativi: n. 230 del 17 marzo 1995, n. 187 del 26 maggio 2000, e n. 52 del 6 febbraio 2007). Rispetto alla normativa precedente, il Titolo IV, capo I, dedicato alle “Sorgenti naturali di radiazioni ionizzanti – Esposizione al radon” determina nuovi livelli di riferimento per la concentrazione di attività di radon, nuove cadenze temporali per la valutazione nei luoghi di lavoro. I livelli massimi di riferimento della concentrazione media annua di

Dipartimento interaziendale Regionale dei Laboratori di Sanita' Pubblica di Area Vasta Laboratorio di Sanita' Pubblica Area Vasta Toscana Sud Est

🖂 Xxxxxx xxx Xxxxxxx - 00000 Xxxxx



attività del radon non sono riferiti esclusivamente ai luoghi di lavoro, ma anche alle abitazioni. In tabella sono riportati i livelli massimi di concentrazione indicati nel decreto.

Tipologia ambiente

Concentrazione media annua (Bq m-3)

Abitazioni esistenti

300

Abitazioni costruite dopo il 31/12/2024

200

Luoghi di lavoro

300

METODICHE DI MISURA

Il funzionamento del sistema in uso presso questo Laboratorio è di tipo passivo e utilizza una camera a ionizzazione di materiale plastico conduttore e un elettrete costituito da un disco di teflon carico elettrostaticamente in modo permanente. Il gas radon diffonde all’interno della camera a ionizzazione. Per effetto del campo elettrostatico prodotto dall’elettrete all’interno della camera a ionizzazione gli ioni negativi, generati dal decadimento del radon e raccolti dall’elettrete, provocano una diminuzione della carica elettrostatica. Tramite un misuratore di campo elettrostatico vengono letti i valori del voltaggio prima e dopo il posizionamento nel luogo di installazione. La differenza di carica elettrostatica dell’elettrete, misurata prima e dopo il posizionamento del dosimetro, risulta proporzionale alla concentrazione di radon nell’ambiente di misura e al tempo di esposizione.

CONSEGNA DEL DOSIMETRO A FINE CAMPIONAMENTO

Al Laboratorio gli elettreti possono essere consegnati ancora alloggiati nella camera a ionizzazione oppure chiusi con il loro coperchio. Se il dosimetro rimane alloggiato nella camera senza dispositivo di chiusura, la consegna del rilevatore deve avvenire entro le 24 ore dalla sua rimozione. Se il richiedente consegna l’elettrete alloggiato nella camera S in posizione OFF oppure chiuso con l’apposito coperchio, il rientro in Laboratorio deve avvenire entro 4 giorni dalla rimozione.

LOCALI

I locali da preferire per effettuare la misura sono gli spazi al livello più basso dell’abitazione/locale/ufficio (situazione più cautelativa). Inoltre sono da scegliere le stanze sulla base dei tempi di permanenza (es. in una camera da letto, in particolare quella dei bambini) e su caratteristiche architettoniche (per esempio orientandosi verso i locali con pareti a diretto contatto con il terreno), eventualmente incrementando il numero dei locali da monitorare se la complessità edilizia lo richiedesse. Locali non adeguati per la misura sono di norma: quelli ad elevata ventilazione (es. cucine, garage), quelli a ridotta permanenza (es. corridoi) e quelli ad elevata umidità (es. bagni).

POSIZIONAMENTO

L’altezza ideale alla quale dovrebbe essere installato il dosimetro è un’altezza compresa tra 1 metro e 30 e 1 metro 80, ad una distanza di almeno 20 cm dai muri perimetrali. Possono influenzare la corretta valutazione della concentrazione di gas radon: umidità, polvere, urti, fonti di calore, campi elettromagnetici e sorgenti di radiazioni ionizzanti differenti da quelle oggetto di indagine. In particolari condizioni di umidità o di polverosità potrebbe essere necessario riporre il dosimetro all’interno della busta in Tyvek®. Il posizionamento del dosimetro deve avvenire lontano da sorgenti che generano intensi campi elettromagnetici e sorgenti di radiazioni ionizzanti differenti da quelle oggetto di indagine. Durante tutto il periodo di misura devono essere verificate le seguenti condizioni:

• nelle stanze vanno mantenute “normali” condizioni d’uso dell’abitazione/locale/ufficio (inclusa la ventilazione)

• il dosimetro radon non deve essere manomesso o colpito

• deve essere evitato lo spostamento del dosimetro

• il dosimetro non va posizionato vicino a fonti di calore (stufe, termosifoni, luoghi in cui sia soggetto all’irradiazione diretta dei raggi solari, per esempio dietro a vetrate) o vicino a ventilatori e ad almeno un metro da finestre e porte. Non va posizionato all’interno di armadi e contenitori chiusi, ecc.

Qualora una delle suddette condizioni non dovesse essere soddisfatta, la misura non potrà essere considerata indicativa e potrebbe risultare alterata. REQUISITI PER L'ACCETTAZIONE DELLA STRUMENTAZIONE

Il cliente deve effettuare il posizionamento dei sensori secondo quanto concordato con il Laboratorio in fase di accettazione dell’ordine in particolare:

a) È responsabilità del cliente, al fine di una corretta valutazione, il rispetto della metodica e delle tempistiche di posizionamento del sensore. Quest’ultimo deve avvenire il prima possibile dal ricevimento e secondo quanto disposto con il personale del Laboratorio. Sarà cura del cliente la corretta compilazione della scheda di installazione, in particolare data e ora di inizio e fine campionamento.

b) La qualità dei risultati dipende dalla correttezza dell’installazione, il Laboratorio risponde solo della correttezza delle tecniche di misura prima e dopo l’installazione negli ambienti.

c) Il posizionamento e la corretta conservazione del rivelatore sono a cura del cliente per tutta la durata del campionamento. Tali informazioni sono descritte anche nella scheda informativa a corredo della strumentazione.

Document Metadata

Filed: February 3rd, 2023