USINA TERMELÉTRICA PRESIDENTE MÉDICI MUNICÍPIO DE CANDIOTA/RS

CGTEE/DTC/068/2011

Julho/2012

A Companhia de Geração Térmica de Energia Elétrica

Aos cuidados: Xxxx Xxxxxx Xxxxxx

A Fundação Xxxx Xxxxxxx, através do Centro de Ecologia da Universidade Federal do Rio Grande do Sul, apresenta o Relatório Inicial do “Programa de Monitoramento de Bioindicadores Ambientais, Aquático e Terrestre na Região de Influência da Usina Termoelétrica Presidente Médici, Candiota, Rio Grande do Sul”, em conformidade com o Contrato CGTEE/DTC/068/2011 celebrado entre a Companhia de Geração Térmica de Energia Elétrica e a Fundação Xxxx Xxxxxxx.

Porto Alegre, 30 de julho de 2011.

Xxxxxxxx xx Xxxxx Xxxxxxx Coordenadora do Projeto Centro de Ecologia/UFRGS

PROGRAMA DE MONITORAMENTO DE BIOINDICADORES AMBIENTAIS, AQUÁTICO E TERRESTRE NA REGIÃO DE INFLUÊNCIA DA USINA TERMOELÉTRICA PRESIDENTE XXXXXX, CANDIOTA, RIO GRANDE DO SUL

1. Objeto do Estudo

O presente Programa de Monitoramento Ambiental está constituído pelo Programa de Monitoramento para o Ambiente Aquático e Terrestre e estes, pelo conjunto de Planos Ambientais associados aos diversos compartimentos ambientais considerados.

O ambiente aquático tem uma rede de monitoramento comum para os compartimentos: Água superficial, Sedimento e Bioindicadores ambientais (fitoplâncton e perifiton, zooplâncton, macrofauna bentônica e ictiofauna).

Para o ambiente terrestre, a rede de monitoramento, sempre que possível, é comum para os compartimentos: Fauna Local (herpetofauna, avifauna), Flora, Bioindicadores para a Qualidade do Ar e Atividade Pecuária.

2. Programa de Monitoramento para o Ambiente Aquático

Para este ambiente estão considerados os compartimentos: água superficial, sedimento e bioindicadores ambientais (fitoplâncton e perifiton, zooplâncton, macrofauna bentônica e ictiofauna).

2.1 Rede de Monitoramento Ambiental

A localização das Estações Amostrais está apresentada na Tabela 2.1.1, onde PM (Ponto de Monitoramento) é a denominação das estações amostrais. Estas Estações Amostrais estão a seguir mapeadas na Figura 2.1.1

Figura 2.1.1 – Mapa de Distribuição das Estações Amostrais da Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Aquático.

Tabela 2.1.1 Localização das Estações Amostrais da Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Aquático

Estação Amostral	Curso d´água	Descrição do Ponto
PM 1	Arroio Candiota	Ponto à montante da BR 293, visando ser a estação amostral de referência Coordenadas UTM 22J 6518528 / 243952
PM 2	Arroio Candiota	Ponto à jusante da Barragem I, visando avaliar todas as atividades desenvolvidas à montante da contribuição dos efluentes hídricos da Usina, visando ser a estação amostral de referência Coordenadas UTM 22J 6506688 / 246690
PM 3	Arroio Candiotinha	Ponto à montante do deságüe no Arroio Candiota, visando avaliar as atividades das indústrias cimenteiras no corpo receptor Coordenadas UTM 22J 6500592 / 250676
PM 4	Arroio Candiota	Ponto à jusante do deságüe dos efluentes da Usina e à montante do deságüe Arroio Candiotinha, visando avaliar as atividades da Usina no corpo receptor Coordenadas UTM 22J 6503415 / 246365
PM 5	Arroio Candiota	Ponto à jusante do deságüe Arroio Candiotinha, visando avaliar as atividades da Usina no corpo receptor Coordenadas UTM 22J 6495108 / 240637
PM 6	Arroio Poacá	Ponto após contribuição da Sanga da Carvoeira, visando avaliar as atividades de mineração de carvão no corpo receptor Coordenadas UTM 22J 6501568 / 239615
PM 7	Arroio Candiota	Ponto após a foz do Arroio Poacá e à jusante de todas as fontes consideradas potencialmente geradoras de impactos ambientais Coordenadas UTM 22J 6474399 / 229614

2.2 Plano de Monitoramento para ÁGUA SUPERFICIAL

2.2.1 Parâmetros Monitorados e Freqüência Amostral

A Tabela 2.2.1 apresenta os parâmetros monitorados no compartimento “Água Superficial”.

Tabela 2.2.1 - Parâmetros para monitoramento das Águas Superficiais

Condutividade

Coliformes termotolerantes (E. coli)

Cor

DBO

Fenóis totais

Fósforo total

Nitrato

Nitrogênio Amoniacal

Metais dissolvidos: Al, Fe, Cu

Metais totais: Hg, As, Cd, Cr, Mn, Ni, Pb, Zn

Óleos e Graxas

Oxigênio Dissolvido

Sólidos dissolvidos totais

Surfactantes

Sulfetos

Temperatura

Toxicidade crônica com S. capricornutum

Toxicidade crônica com C.dubia

Toxicidade crônica com P.promelas

Turbidez

A freqüência do monitoramento será trimestral, para um período de 12 meses.

A programação para o desenvolvimento dos trabalhos encontra-se a seguir apresentada:

Atividade/Mês

2012

2013

Planejamento

Amostragem em campo

Análises Laboratoriais

e estatísticas

Integração dos dados e

confecção de

Relatório

2.2.2 Coleta das Amostras

Os procedimentos de amostragem apresentados seguem as orientações da Norma NBR 9898/87 – Preservação e técnicas de amostragem de efluentes líquidos e corpos receptores.

Para amostragem de Água Superficial os seguintes procedimentos serão seguidos:

• A coleta será realizada diretamente nos frascos de coleta, previamente lavados com HNO3 0,1 M e três vezes com água deionizada;

• O frasco será ambientado previamente com a água do ponto a ser amostrado;

• A amostra será coletada mergulhando-se o frasco de coleta a aproximadamente 30 cm abaixo da superfície da água, com a boca voltada contra a corrente (coleta manual);

• Nos casos em que for coletado um grande volume de amostra a ser distribuída em vários frascos, será empregado um recipiente de transposição (tipo balde, galão ou outro recipiente adequado), de material quimicamente inerte, e o volume do recipiente será distribuído entre todos os frascos de análises, a fim de garantir a homogeneidade das amostras nos diversos frascos.

Observações:

a) Sempre que for empregado um mesmo frasco de transposição em várias amostragens sucessivas em pontos diferentes, este será lavado com água deionizada ou destilada e com amostra do local antes da nova coleta, tendo-se o cuidado de não contaminar a água do local ao processar a lavagem;

b) Nos casos de amostragem a partir de margens e pontes, em locais de difícil acesso, será utilizado o frasco de transposição provido de peso, arremessando-o até um local bem distante da margem, prender a extremidade livre da corda em um ponto fixo;

No momento da coleta serão medidos, no próprio local os seguintes parâmetros:

• temperatura;

• pH;

• Oxigênio Dissolvido.

O volume de Água Superficial a ser coletado, o tipo de frasco para armazenamento, a preservação requerida e o prazo para o ensaio ambiental estão apresentados na Tabela 2.2.2.

Tabela 2.2.2 - Especificações técnicas para a preservação de amostras de água superficial

Parâmetro	Frasco	Volume Mínimo	Preservação	Prazo Análise
Condutividade	P,V	500mL	Refrigerar a 4°C	28 dias
Coliformes termotolerantes (E. coli)	V	Mais que 100mL	Refrig.<10°C. Adicionar 0,3 mL para 120 mL de amostra de EDTA (372 mg/L).	Até 30h
Cor	P,V	300mL	Refrigerar a 4°C	48 horas
Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO)	P,V	1000mL	Refrigerar a 4°C	48 horas
Fenóis totais	P,V	500mL	H2SO4 conc. até pH < 2. Refrigerar a 4°C	28 dias
Fósforo Total	V	200mL	H2SO4 conc. até pH < 2. Refrigerar a 4°C	28 dias
Nitrato	P,V	100mL	Refrigerar a 4°C	48 horas
Nitrogênio Amoniacal	P,V	1000mL	Refrigerar a 4°C	7 dias
Metais dissolvidos: Al, Fe, Cu	P,V	1000mL	Refrigerar a 4°C e filtração em membrana de 0,45 μm	24 horas
Metais totais:As,Cd, Pb, Cr, Mn, Ni, Zn	P,V	1000mL	HNO3 conc. até pH< 2. Refrigerar a 4°C	180 dias
Metais totais: Hg	P,V	500mL	2mL sol. K2CrO7 a 20% em sol. HNO3 1:1. Refrigerar a 4°C	28 dias
Óleos e Graxas	Vidro de boca larga	1000mL	H2SO4 conc. até pH < 2. Refrigerar a 4°C	28 dias
Oxigênio Dissolvido	-	-	Medir em campo.	imediato
PH	-	-	Medir em campo	imediato
Sólidos Dissolvidos Totais	P,V	1000mL	Refrigerar a 4°C	7 dias
Surfactantes	P,V	250mL	Refrigerar a 4°C	48 h
Sulfeto	P,V	100mL	Adicionar 4 gotas de acetato de zinco 2N/100mL e NaOH até pH>9. Refrigerar a 4°C	28 dias
Temperatura	-	-	Medir em campo	imediato
Toxicidade crônica com S. capricornutum	P	5 L	Refrigeração por 48 horas e congelamento até 60 dias	60 dias
Toxicidade crônica com C.dubia	P	5 L	Refrigeração por 48 horas e congelamento até 60 dias	60 dias
Toxicidade crônica com P.promelas	P	20 L	Refrigeração por 48 horas e congelamento até 60 dias	60 dias
Turbidez	P, V	200mL	Refrigerar a 4°C e manter ao abrigo da luz	24 horas

P= plástico, V=vidro

2.2.3 Métodos Analíticos

As metodologias analíticas que serão seguidas para as análises químicas, físicas e biológicas propostas nas amostras de água superficial estão descritas na Tabela 2.2.3.

Tabela 2.2.3 – Metodologias analíticas empregadas nos ensaios de Água Superficial

PARÂMETRO	METODOLOGIA	REFERÊNCIA
Condutividade	Condutometria	Standard Methods 21th 9711 B
Coliformes termotolerantes (E. coli)	Substrato enzimatico	Standard Methods 21th 9223 B
Cor	Espectrofotometria	Standard Methods 21th 2120 C
Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO)	Método de Winkler	Standard Methods 21th 5210 B
Fenóis totais	Absorciometria com clorofórmio	EPA 9065
Fósforo Total	Absorciometria com redução do ácido ascórbico	Standard Methods 21th 4500 P E
Nitrato	Cromatografia iônica	Standard Methods 21th 4110 B
Nitrogênio Amoniacal	Nesslerização	Standard Methods 21th 4500-C ou EPA 350.2
Metais dissolvidos: Al, Fe, Cu	ICP-OES	Standard Methods 21th 3030/3120 B
Metais totais: As, Cd, Pb, Cr, Mn, Ni, Zn	ICP-OES	Standard Methods 21th 3030/3120 B
Metais totais: Hg	CV-AA	Standard Methods 21th 3112B
Óleos e Graxas	Gravimetria -extração com soxhlet	Standard Methods 21th 5520
Oxigênio Dissolvido	Método Potenciométrico- Oxímetro	NBR 9898/87

pH	Método Potenciométrico- pHmetro	NBR 14339 / 1999 ou Standard Methods 21th 9711 B
Sólidos Dissolvidos Totais	Gravimetria- secagem à 180°C	Standard Methods 21th 2540 C
Surfactantes	Absorciometria com azul de metileno	Standard Methods 21th 5540 C
Sulfeto	Iodometria	Standard Methods 21th
Temperatura	Termometria	NBR 9898/87
Tox. crônica com S.capricornutum	Ensaios Ecotoxicológicos	NBR ABNT 12648/2005
Tox. crônica com Ceriodaphnia dubia	Ensaios Ecotoxicológicos	NBR ABNT 13373/2005
Tox. crônica com Pimephales promelas	Ensaios Ecotoxicológicos	NBR ABNT 15499/2007
Turbidez	Nefelometria	Standard Methods 21th 2130 B

2.2.4 Indicadores de Qualidade Ambiental

Os resultados analíticos serão comparados com os Padrões de Qualidade para Águas Superficiais estabelecidos pela Resolução CONAMA 357 de 2005 e também integrados na forma de índices de qualidade.

Os índices de qualidade de águas têm sido amplamente aplicados, mundialmente, como ferramenta de monitoramento dos recursos hídricos. Representam instrumentos que agrupam as informações analíticas em classificações simples e de fácil interpretação para a avaliação pública e dos órgãos tomadores de decisões.

Serão considerados dois indicadores, o “Índice de parâmetros mínimos para a preservação da vida aquática” (IPMCA) e o “Índice de Qualidade de Água” (IQA).

2.2.4.1 Índice de parâmetros mínimos para a preservação da vida aquática (IPMCA)

O IPMCA tem o objetivo de avaliar a qualidade das águas para fins de proteção da fauna e flora em geral, leva em consideração a presença e concentração de contaminantes químicos tóxicos, seu efeito sobre os organismos aquáticos (toxicidade) e dois dos parâmetros considerados essenciais para a biota (pH e oxigênio dissolvido).

O IPMCA é composto por dois grupos de parâmetros:

• grupo de substâncias tóxicas (cobre, zinco, chumbo, cromo, mercúrio, níquel, cádmio, surfactantes e fenóis). Neste grupo foram incluídos os parâmetros que identificam o nível de contaminação por substâncias potencialmente danosas às comunidades aquáticas.

• grupo de parâmetros essenciais (oxigênio dissolvido, pH e toxicidade).

Para cada parâmetro analisado foram estabelecidos três diferentes níveis, para os quais são feitas as ponderações numéricas de 1, 2 e 3. Esses diferentes níveis constam da Tabela 2.2.4, sendo que os de ponderação 1 correspondem aos padrões de qualidade de água, atualizados para a legislação CONAMA 357/2005.

Os níveis relativos às ponderações 2 e 3 foram obtidos das legislações americana e francesa, as quais estabelecem limites máximos permissíveis de substâncias químicas, na água, para evitar efeitos crônicos e agudos à biota aquática, respectivamente. Essas ponderações têm o seguinte significado:

• Ponderação 1: águas com características necessárias para manter a sobrevivência e a reprodução dos organismos aquáticos, retirados da CONAMA 357;

• Ponderação 2: águas com características necessárias para a sobrevivência dos organismos aquáticos, porém a reprodução pode ser afetada a longo prazo, obtidos da legislação americana e francesa;

• Ponderação 3: águas com características que podem comprometer a sobrevivência dos organismos, obtidos da legislação americana e francesa.

Tabela 2.2.4 - Parâmetros e ponderações utilizados para a determinação do IPMCA.

	Níveis	Ponderação
Oxigênio dissolvido (mg.L-1)	> 5	1
	3 a 5	2
	< 3	3
pH	6 – 9	1
	5 a 6 e 9 a 9.5	2
	< 5 e > 9.5	3
Toxicidade	não tóxico	1
	Efeito crônico	2
	Efeito agudo	3
Cádmio total (mg.L-1)	< 0.001	1
	0.001 a 0.005	2
	> 0.005	3
Cromo total (mg.L-1)	< 0.05	1
	0.05 a 1	2
	> 1	3
Cobre dissolvido (mg.L-1)	< 0.009	1
	0.009 a 0.05	2
	> 0.05	3
Chumbo total (mg.L-1)	< 0.01	1
	0.01 a 0.08	2
	> 0.08	3
Mercúrio total (mg.L-1)	< 0.0002	1
	0.0002 a 0.001	2
	> 0.001	3
Níquel total (mg.L-1)	< 0.025	1
	0.025 a 0.160	2
	> 0,160	3
Fenóis totais (mg.L-1)	< 0.003	1
	0.003 a 0.05	2
	> 0.05	3
Surfactantes (mg.L-1)	< 0.5	1
	0.5 a 1	2
	> 1	3
Zinco total (mg.L-1)	< 0.18	1
	0.18 a 1	2
	> 1	3

Parâmetros Essenciais

Substâncias Tóxicas

Em função dos níveis detectados nas amostras de água e suas respectivas ponderações, calcula-se o IPMCA da seguinte forma:

IPMCA = A x B

Onde:

A = valor da maior ponderação do grupo de parâmetros essenciais;

B = Valor médio das três maiores ponderações do grupo de substâncias tóxicas. Este valor é um número inteiro e o critério de arredondamento deverá ser o seguinte: valores menores que 0,5 serão arredondados para baixo e valores maiores ou iguais a 0,5 serão arredondados para cima.

Utilizando essa metodologia, o valor do IPMCA pode variar de 1 a 9. Para efeito de classificação das águas, o IPMCA foi subdividido em quatro níveis, de acordo com o significado relativo às ponderações, conforme descritos abaixo:

IPMCA Classificação da água

1 Boa (Adequada)

2 Regular

3 e 4 Ruim

>= 6 Péssima (Inadequada)

2.2.4.2 Índice de Qualidade da Água

Para o cálculo do IQA, será utilizado o método desenvolvido pela NSF (National Sanitation Foundation), modificado pelo COMITÊSINOS para ser utilizado na Região Sul, que incorpora 8 parâmetros considerados relevantes para a avaliação da qualidade das águas, tendo como determinante principal a utilização das mesmas para abastecimento.

O IQA é determinado pelo produtório ponderado dos sub-índices de qualidade correspondentes aos parâmetros constantes da Tabela 2.2.5, com seus respectivos pesos ponderais:

Tabela 2.2.5 - Parâmetros constantes do IQA

Parâmetro (qi) Peso ponderal (wi)

pH 0,13

Saturação do oxigênio 0,19 DBO5 0,11

Sólidos totais 0,09

Fósforo total 0,11

Nitrato 0,11

Turbidez 0,09

Coliformes

termotolerantes 0,17

Modelo produtório para o cálculo do IQA:

Onde:

IQA = Π qi wi

wi = peso relativo do iésimo parâmetro

qi = qualidade relativa do iésimo parâmetro i = número de ordem do parâmetro ( 1 a 8 )

A partir do cálculo efetuado, pode-se determinar a qualidade das águas brutas que, indicada pelo IQA, numa escala de 0 a 100, é classificada para abastecimento público, segundo a gradação da Tabela 2.2.6.

Tabela 2.2.6 Qualidade da água segundo o IQA

Resultado (IQA) Qualidade

80 – 100 ótima

52 – 79 boa

37 – 51 aceitável

20 – 36 ruim

0 – 19 péssima

O compartimento ambiental monitorado, “Água Superficial”, terá como responsável técnica a Dra. Xxxxx Xxxxxx Xxxx Xxxxxxxxx.

As análises ambientais serão realizadas nos Laboratórios Bioensaios e Ecotox.

2.3 Plano de Monitoramento para SEDIMENTOS

O Plano de Monitoramento Ambiental para o compartimento “Sedimentos” atendeu as condições a seguir estabelecidas.

2.3.1 Parâmetros Monitorados e Freqüência Amostral

Os parâmetros ambientais para o Plano de Monitoramento Ambiental estão apresentadas na Tabela 2.3.1.

Tabela 2.3.1 - Parâmetros para monitoramento dos Sedimentos

Metais Totais: Al, Xx, Cu, Hg, As, Cd, Cr, Mn, Ni, Pb, Zn

Metais Potencialmente móveis: Al, Fe, Cu, Hg, As, Cd, Cr, Mn, Ni, Pb, Zn

Matéria Orgânica

Textura Granulométrica

Toxicidade com Hyalella azteca

A freqüência do monitoramento será trimestral, para um período de 12 meses.

A programação para o desenvolvimento dos trabalhos encontra-se a seguir detalhada:

O plano de trabalho foi detalhado em 9 atividades, considerando o mês como unidade de tempo.

A coleta de amostras ambientais estará dentro do contexto do grupo de estudos denominado Ambiente Aquático. Os sedimentos serão amostrados perfazendo um total aproximado de três dias de atividades de campo, desconsiderando o tempo de viagem Porto Alegre - Candiota e Candiota - Porto Alegre.

O acondicionamento das amostras é uma atividade importante dentro do contexto do projeto, já que a temperatura bem como os frascos adequados para que haja certeza de que a fração recolhida seja a representação do todo.

O transporte de campo envolve juntamente com o acondicionamento, item importante, já que no prazo mais curto possível considerando a logística do projeto, o material deve ser encaminhado até as diversas bancadas laboratoriais envolvidas na busca dos dados.

O encaminhamento para processamento diz respeito a sincronia do deslocamento, guardando as propriedades das amostras e o devido encaminhamento com os vínculos logísticos adequados de identificação dos diversos materiais amostrados.

O recebimento dos resultados diz respeito a entrega aos “expertises” que irão reunir de forma lógica, apresentar os dados obtidos no formato mais adequado buscando uma visão dos sistemas estudados.

A interpretação dos dados obtidos será o refinamento da matriz obtida com os seus significados ambientais.

A transformação em informação consta o cruzamento de interpretações importantes de um ou mais compartimento de estudo, adequando estes cruzamentos ao escopo destas atividades de vigilância ambiental.

A confecção de relatório trimestral são os dados, a interpretação dos resultados e as devidas transformações em informação obtidas, colocadas em um documento com enfoque do período de recolha de amostra( uma campanha amostral), de forma lógica técnica e cientifica, com fins de informar os tomadores de decisão da CGTEE frente os dados, as informações e as integrações obtidas.

O relatório Anual é a reunião dos dados, das interpretações dos resultados e das devidas transformações em informação obtidas colocadas em um documento com enfoque de período de um ano (quatro trimestres), de forma lógica técnica e cientifica, explorando as questões de sazonalidade já que são quatro campanhas amostrais relacionadas as quatro estações do ano. Sempre dentro do contexto de subsidiar os tomadores de

decisões, da CGTEE, com a vigilância ambiental que envolve a atividade de Termeletricidade no Arroio Candiota.

2.3.2 Metodologias

Os sedimentos superficiais de fundo, estudados do ponto de vista geoquímico, serão coletados com o amostrador do tipo “mud snapper”, analisando-se o primeiro centímetro da camada de fundo.

As amostras serão armazenadas em frascos de polietileno, previamente limpos com ácidos, e encaminhadas ao laboratório. As mesmas serão secas a uma temperatura próxima a 600C e homogeneizadas e quarteadas, visando compor uma subamostra com 50g aproximadamente de peso para a análise geoquímica. Uma vez secas o prazo de análise é de 180 dias.

Os sedimentos superficiais de fundo, estudados do ponto de vista ecotoxicológico serão coletados utilizando-se draga do tipo Eckmann de modo que:

• o sedimento não seja lavado pela água durante a ascensão do equipamento coletor à superfície;

• a draga será armada e jogada no local onde se deseja amostrar;

• a porção de sedimento coletada será disposta em uma bandeja e a parte superior coletada com o auxílio de uma espátula plástica, o primeiro centímetro que corresponde a camada ativa do ecossistema;

Observações:

a) à porção da amostra que entrar em contato com as partes metálicas do equipamento de coleta será desprezada;

b) O recipiente de coleta será totalmente preenchido com amostra para evitar reações de oxi-redução.

As amostras para o ensaio de Toxicidade aguda com H. azteca terão peso mínimo de 200 g, serão armazenadas em frascos de polietileno, previamente limpos, sendo refrigeradas para um prazo de análise de até 60 dias.

As metodologias analíticas para as análises químicas, físicas e biológicas nas amostras de sedimentos estão descritas na Tabela 2.3.2.

Tabela 2.3.2 – Métodos analíticos empregados nas amostras de sedimentos

Ensaio	Método Analítico
Hg total	Digestão ácida com Microondas/ AA-CV EPA 3052/EPA 7471A
Hg potencialmente móvel	AA-CV e EPA 0000X
Xx, Xx, Xx, Xx, Xx, Xx, Xx, Xx, Xx, Xx potencialmente móveis	Lixiviação ácida/ICP-OES EPA 3050B/6010C
Al, As, Cd, Cr, Mn, Cu, Ni, Pb, Zn, Fe totais	Digestão ácida com Microondas/ ICP-OES e AA-Forno de Grafite. EPA 3052/6010C
pH	Método potenciométrico
Matéria Orgânica	Método gravimétrico
Textura Granulométrica	Análise microscópica
Toxicidade com Hyalella azteca	ABNT, 2007. NBR 15470

2.3.3 Indicadores de Qualidade de Sedimentos

As referências internacionais para a elaboração de indicadores de qualidade ambiental para sedimentos, remetem para a aplicação do Recomendado pelo USEPA Esta instituição estabelece os indicadores SEL (Nível de Severo Efeito) e o PEC (Nível Provável de Efeito da Concentração).

Tanto o SEL como o PEC, envolvem uma expectativa de previsão, de prognóstico do distúrbio pronunciado para a comunidade bentônica.

O SEL (Nível de Severo Efeito) é um índice de risco estabelecido para contaminação de metais em sedimentos. Este caracteriza valores para os metais acima dos quais estarão determinando os sedimentos como contaminados.

O PEC (Nível Provável de Efeito da Concentração) igualmente determina a contaminação dos sedimentos estudados, basta que os valores encontrados ultrapassem os valores estabelecidos pelo PEC.

Os valores estabelecidos para SEL e PEC, não são simplesmente uma avaliação centrada nos sedimentos, mas sim uma resultante de vários anos de estudos e pesquisas derivados da combinação dos resultados de estudos em ambiente laboratorial e de campo, que inclui uma variedade de metodologias (níveis de base, partição, equilíbrio, fatores limitantes a fauna e a flora, ecotoxicologia, e outros ).Estas pesquisas foram desenvolvidas em conjunto e contemporaneamente no Canadá, EUA e Inglaterra. Estes valores ou taxas limites são aceitas no mundo inteiro como consenso científico.

A Tabela 2.3.3 apresenta as taxas estabelecidas para os dois níveis de referencias estabelecidos pelo USEPA.

Tabela 2.3.3 – Níveis de referências internacionais de proteção a organismos bentônicos, para comparação e cálculo de índice para os sedimentos.

Metal	Unidades	SEL (1)	PEC (2)
As	μg/g	33	33
Cd	μg/g	5	10
Cr	μg/g	110	110
Cu	μg/g	150	110
Fe	%	4
Pb	μg/g	130	250
Mn	μg/g	1100	1100
Hg	μg/g	1,1	2
Ni	μg/g	49	75
Zn	μg/g	460	820

(1) níveis estabelecidos por XXXXXXXX et al (1993),

(2) níveis de referência estabelecidos por MacDONALD (2000).

O índice estabelecido pela razão entre a taxa encontrada e a taxa índice (Tabela 2.3.3) para cada metal, tanto para o SEL quanto para o PEC, indica o nível de prejuízo ao sistema ambiental em estudo. Índices na faixa de 0,5 a 1 devem servir como sinal de atenção para a presença do metal avaliado. Índices iguais ou superiores a 1 devem servir como indicação de ocorrência de prejuízo ao sistema ambiental.

As análises ambientais serão realizadas nos Laboratórios Bioensaios e Ecotox.

O compartimento ambiental monitorado, sedimentos, terá como responsável técnico o Dr. Xxxxxx Xxxxxxx Xxxxxx Xxxxxxx.

2.4 Plano de Monitoramento para FITOPLÂNCTON E PERIFÍTON

O Monitoramento Ambiental para o compartimento “FITOPLÂNCTON E PERIFITON” terá como objetivos:

a) Caracterizar a comunidade fitoplanctônica existente na área de influência da Usina Termelétrica de Candiota, quanto à composição, distribuição espaço-temporal, abundância e dominância das espécies;

b) Correlacionar o estado trófico das águas superficiais monitoradas no local do empreendimento com a estrutura do fitoplâncton.

c) Analisar a variação espacial e temporal da composição e estrutura da comunidade de algas epilíticas.

d) Relacionar as variáveis ambientais abióticas com a estrutura da comunidade de algas epilíticas na busca de relações de dependência ao longo do tempo e do espaço, nas estações de amostragem.

2.4.1 Parâmetros Monitorados, Freqüência Amostral, Coleta e Metodologia

A freqüência do monitoramento será trimestral para um período de 12 meses, monitorando as comunidades de fitoplâncton e perifíton.

I- FITOPLÂNCTON

a) Análise Quantitativa de Superfície

Submergir o frasco de coleta de vidro âmbar com volume de 1 litro e coletar a água na superfície, preservando a amostra com formaldeído 4%. Identificar os recipientes por pontos de coleta e local.

b) Análise Qualitativa

Para a coleta, será utilizado um balde de 20 litros submergindo-o na água a uma profundidade de aproximadamente 15 cm da superfície. Filtrar o conteúdo em uma rede de plâncton com malha de náilon com porosidade de 30 a 45 μm. Acondicionar a amostra em um recipiente de polietileno de 250 mL e conservá-la em solução de formaldeído a 4%, conforme Figura

2.4.1 Identificar os recipientes por pontos de coleta e local.

Figura 2.4.1 Ilustração da Coleta qualitativa de amostra de fitoplâncton.

c) Estudo Qualitativo

A análise taxonômica do fitoplâncton é realizada ao microscópio com contraste de fase entre lâminas e lamínulas, em aumentos de 400 a 1600 vezes. Para identificação dos espécimes registrados serão utilizadas bibliografias especializadas para cada grupo de algas e para a classificação em níveis de divisão e classe será adotado o sistema de HOEK et al. (1995).

d) Estudo Quantitativo

A contagem numérica dos organismos fitoplanctônicos é realizada ao microscópio utilizando Câmaras de Sedgewick-Rafter de 5 cm de comprimento por 2 cm de largura, dividida em 1000 campos, possuindo uma capacidade volumétrica de 1 mL. O resultado será expresso em número de indivíduos/mL.

Para a determinação das espécies dominantes e abundantes serão utilizados os critérios estabelecidos por LOBO & LEIGHTON (1986), os quais consideram abundantes aquelas cuja ocorrência numérica supera a média de ocorrência dos indivíduos por espécie e dominantes as que apresentam uma ocorrência superior a 50% do total de indivíduos contados na amostra.

A riqueza de espécies será avaliada pelo número total de táxons encontrados na amostra através das contagens. O índice de diversidade (H’) utilizado para estimar a diversidade específica para cada amostra, baseia-se no índice de Shannon-Wiener, calculado a partir do programa de Divers (KREBS, 1989).

II - PERIFITON

As coletas para a análise quantitativa das algas epilíticas serão realizadas através da raspagem de pedras, utilizando uma superfície de 5 x 5 cm, abrangendo uma área de 25 cm2. Em cada estação de amostragem serão raspadas três pedras (75 cm2) da qual será retirada uma amostra final correspondendo a 25 cm2, e fixadas com 4 ml de formaldeído, conforme as Figuras 2.4.2 e 2.4.3.

A amostra composta será homogeneizada e transferida para as câmaras de sedimentação de 2, 5 ou 10 ml, de acordo a necessidade do material (dependendo da quantidade de sedimento e/ou detritos na amostra, obtido em cada estação amostral) e quantificada em microscópio invertido através da técnica de UTERMÖHL (1958), sendo a densidade do perifíton expressa em indivíduos/cm².

Figura 2.4.2. Ilustração com a raspagem das pedras para a coleta de organismos do Perifiton.

Figura 2.4.3. Ilustração com o acondicionamento da amostra de Perifíton.

a) Estudo qualitativo e quantitativo

O estudo das comunidades perifíticas será realizado em nível de classes, excetuando-se os táxons abundantes e dominantes que, sempre que possível, serão identificados em nível infragenérico. Para identificação dos espécimes registrados serão utilizadas bibliografias especializadas para cada grupo de algas e para a classificação em níveis de divisão e classe será adotado o sistema de HOEK et al. (1995). Serão quantificadas somente as diatomáceas com cloroplastos e as contagens serão estabelecidas através da curva de área mínima.

Para a confirmação dos táxons em nível específico e infra-específico, as algas serão observadas em microscópio binocular, acoplado com câmara clara e ocular de medição.

b) Indicadores de Qualidade

baseia-se no índice de Xxxxxxx-Xxxxxx, calculado a partir do programa de Divers (KREBS, 1989).

2.4.2 Plano de Trabalho

A programação para o desenvolvimento dos trabalhos encontra-se a seguir apresentada:

Atividade/Mês

2012

2013

Planejamento

Amostragem e Coleta em campo

Estudos Laboratoriais

e estatísticas

Integração dos dados e

Relatórios.

A análise interpretativa dos dados de campo será realizada no Centro de Ecologia da UFRGS.

O compartimento ambiental monitorado, “Fitoplâncton e Perifiton”, terá como responsável técnica a Dra. Xxxxxxxx xx Xxxxx Xxxxxxx.

2.5 Plano de Monitoramento para ZOOPLÂNCTON

O Monitoramento Ambiental para o compartimento “ZOOPLÂNCTON” terá como objetivos:

a) Caracterizar a comunidade zooplanctônica existente na área de influência da Usina Termelétrica de Candiota, quanto à composição, distribuição espaço-temporal, abundância e dominância das espécies;

b) Correlacionar o estado trófico das águas superficiais monitoradas no local do empreendimento com a estrutura do zooplâncton.

2.5.1 Parâmetros Monitorados, Freqüência Amostral, Coleta e Metodologia

A freqüência do monitoramento será trimestral, no período de um ano.

O monitoramento da comunidade zooplânctônica será realizado a partir de uma análise qualitativa e de uma análise quantitativa das espécies coletadas em cada ponto amostral.

Para cada ponto amostral, será coletado 300 litros de água superficial, retirados com o auxílio de bomba de sucção e filtrados com rede de plâncton de 65 μm de abertura de malha para concentração do material biológico, conforme a Figura 2.5.1.

A amostra coletada será fixada com formol 4% e neutralizada com bórax a 1%.

Figura 2.5.1 Ilustração com a metodologia de coleta de amostras qualitativas e quantitativas de zooplâncton.

a) Estudo Qualitativo

As análises qualitativas serão realizadas com exame ao microscópio óptico, binocular, com aumento de até 400 vezes. Os espécimens de Cladocera e Copepoda serão dissecados em glicerina com agulhas de dissecção, ao microscópio estereoscópico, com aumento de até 60 vezes.

Na identificação taxonômica das espécies zooplanctônicas, serão utilizadas as chaves de identificação, diagnoses e descrições dos seguintes autores: XXXXXXX-XXXXXXX (1974), KOSTE (1978), XXXX (1985), XXXXX &

GOEDEN (1986) e XXXXXX-XXXXXXXX (1997).

b) Estudo Quantitativo

As análises quantitativas serão realizadas através de contagens numéricas ao microscópio estereoscópico. Para as contagens de indivíduos pertencentes aos grupos de Cladocera e Copepoda (copepoditos e adultos), será utilizada câmara de contagem de Bogorov. Para as contagens de Rotifera e náuplios de Copepoda será utilizada câmara de Sedgewick-Rafter em microscópio óptico. Os valores obtidos para densidade absoluta de organismos serão expressos em xxxxxx xx xxxxxxxxxx xxx xxxxx xxxxxx xx xxxx (Xx. ind/m3).

A definição de constância de ocorrência das espécies nas amostras será baseada nas porcentagens sugeridas por DAJOZ (1973): 0 a 25% - ocasionais; >25 a 50% - espécies acessórias e >50% - espécies constantes.

2.5.2 Indicadores de Qualidade do Zooplâncton

A diversidade biológica será calculada utilizando-se o índice de XXXXXXX- WINNER, através da fórmula:

S ni ni

H = - ∑ --- x ln ----, onde i=1 N N

S = número de espécies;

ni = número de indivíduos em cada espécie; N = número total de indivíduos.

A riqueza considerada é o número de espécies e a eqüitatividade ou uniformidade, se refere à distribuição dos organismos nos taxons. A eqüitatividade será calculada através da equação:

E = -------, onde:

Hmax

H = é a diversidade de espécies obtida pelo índice de SHANNON-WINNER, e Hmáx é a diversidade de espécies sob condições de máxima equitatividade, obtida do logaritmo do número de espécies da amostra.

Para o tratamento dos dados, será utilizada uma análise multivariada de agrupamento (Cluster analysis).

2.5.3 Plano de Trabalho

A programação para o desenvolvimento dos trabalhos encontra-se a seguir apresentada:

Atividade/Mês

2012

2013

Planejamento

Amostragem e Coleta em campo

Estudos Laboratoriais

e estatísticas

Integração dos dados e

Relatórios.

A análise interpretativa dos dados de campo será realizada no Centro de Ecologia da UFRGS.

O compartimento ambiental monitorado, “zooplâncton”, terá como responsável técnica a Dra. Xxxxxxxx xx Xxxxx Xxxxxxx.

2.6 Plano de Monitoramento para Macrofauna Bentônica

2.6.1 Objetivos

Objetivo geral: Atribuir a qualidade dos locais monitorados através da análise da estrutura da comunidade de invertebrados bentônicos nos locais monitorados.

Objetivos Específicos:

a) Caracterizar a estrutura da comunidade de macroinvertebrados bentônicos através dos atributos densidade de organismos, composição, abundância e dominância das famílias.

b) Analisar a distribuição espaço-temporal das comunidades.

c) Analisar os resultados da aplicação de índices bióticos, para avaliação da qualidade ambiental dos pontos amostrados.

d) Correlacionar a estrutura e distribuição da macrofauna bentônica com as variáveis ambientais do sedimento.

2.6.2 Parâmetros Monitorados, Frequência Amostral e Coleta

- A frequência amostral do monitoramento será trimestral para um período de doze meses.

- A macrofauna bentônica será analisada a partir de amostras quantitativas coletadas nas estações amostrais estabelecidas para este

projeto. Amostras qualitativas serão efetuadas para a caracterização da biodiversidade.

Em cada ponto amostral será efetuada a coleta de amostras, buscando contemplar os diferentes substratos. Para a coleta das amostras quantitativas serão utilizados um busca fundo do tipo pegador com área conhecida, um amostrador do tipo “surber” e puçás. O material coletado será lavado em campo, com uma malha de 0,210mm de abertura, acondicionado em sacos plásticos, devidamente identificados, fixado com formol tamponado a 4%, e corado com Rosa Bengala.

No laboratório, as amostras serão novamente lavadas em peneira com malha de nylon de 0,210mm de abertura. Este tamanho de malha vem sendo constantemente utilizado para assegurar a retenção de um número maior de exemplares juvenis da macrofauna. O material retido na malha será analisado sob estereomicroscópio. Os organismos serão triados, contados e identificados. Serão confeccionadas lâminas permanentes e semi-permanentes para a identificação dos organismos, sendo que esta identificação deverá ser realizada no menor nível taxonômico possível. O material identificado será colocado em vidros, de acordo com o grupo taxonômico e será conservado em álcool 70%, ou em lâminas permanentes e semi-permanentes, para posterior depósito em coleções nesta e/ou em outras instituições.

A identificação dos macroinvertebrados será realizada com auxílio de

chaves de identificação (PENNAK, 1978; XXXXXXXX, 1981; XXXXXXXXXXX & XXXXXXXX, 1989; XXXXXX, 1995; XXXXXXXX & XXXX 1995; XXXXXXX &

CUMMINS 1996; XXXXXXXX & XXXXXXX; 2008. TRIVINHO-STRIXINO &

XXXXXXXX, 1995; XXXXX & XXXXXXX, 2006.), sendo a categoria de família o menor nível taxonômico utilizado para determinação das UTO's (Unidade Taxonômica Operacional).

2.6.3 – Indicadores de Qualidade

Os dados obtidos serão reunidos e apresentados em tabelas e gráficos, sendo os resultados expressos em abundância relativa (%) e densidade média (indivíduos por m2).

Além das análises multivariadas, na análise de qualidade ambiental dos pontos amostrados, será considerada a presença/ausência dos organismos e grau de tolerância de cada família. Serão calculados ainda, os seguintes índices bióticos:

•Riqueza de Famílias: número de famílias presentes em cada amostra (réplicas).

•Índice de Equitatividade de Pielou

•Índice de Diversidade de Xxxxxxx-Xxxxxx

•Índice EPT, que considera as ordens Ephemeroptera, Plecoptera e Trichoptera.

•Índice de dominância de Swartz (SDI): famílias que compõem 75% do total de organismos (XXXXXX et al., 1985).

•Índice IBMWP (Tolerância e sensibilidade dos organismos), adaptação de XXXX-XXXXXXXX & XXXXXXX-XXXXXX (1988).

2.6.4 Plano de Trabalho

O plano de trabalho foi detalhado em 10 atividades, considerando o mês como unidade de tempo:

Os procedimentos de coleta e preservação das amostras serão realizados de acordo com a RESOLUÇÃO Nº 724, DE 3 DE OUTUBRO DE 2011 que estabelece procedimentos padronizados para a coleta e preservação de amostras de águas superficiais para fins de monitoramento da qualidade dos recursos hídricos, no âmbito do Programa Nacional de Avaliação da Qualidade das Águas (PNQA). (Guia nacional de coleta e preservação de amostras: água, sedimento, comunidades aquáticas e efluentes líquidos. São Paulo: CETESB; Brasília: ANA, 2011).

Coleta de amostras da macrofauna – Concomitante com as demais do grupo dos descritores aquáticos. A macrofauna será amostrada perfazendo um total aproximado de três dias de atividades de campo.

Acondicionamento das amostras. Transferência, fixação e acondicionamento do material coletado.

Processamento das amostras. No laboratório, lavagem das amostras sobre um conjunto de peneiras com diferentes aberturas de malha, sendo a menor de 0,021mm. Preservação das amostras. Triagem dos organismos sob estereomicroscópio.

Confecção de lâminas para a identificação dos organismos sob microscópio óptico, conforme metodologia específica.

Na Identificação dos organismos serão utilizadas diversas chaves de identificação e técnicas específicas para cada táxon.

Na análise dos dados (composição dos táxons) será efetuado o refinamento da matriz obtida com os seus significados ambientais.

A transformação em informação refere-se ao cruzamento de interpretações importantes de um ou mais compartimento de estudo.

A confecção de relatório trimestral de forma lógica, técnica e cientifica.

O Relatório Anual será o produto da análise dos dados e das interpretações dos resultados de um ano (quatro trimestres), de forma lógica técnica e cientifica.

A análise interpretativa dos dados de campo será realizada no Centro de Ecologia da UFRGS.

O compartimento ambiental monitorado, “Macrofauna Bentônica”, terá como responsável técnica a Ma. Xxxxxx Xxxxx Xxxxxxxx xx Xxxxxxx.

2.7 Plano de Monitoramento para Bioindicadores Ambientais: ICTIOFAUNA

O Plano de Monitoramento Ambiental para o compartimento “ICTIOFAUNA” atende as condições a seguir estabelecidas.

Os objetivos específicos dessa família de bioindicadores são:

a) Avaliar a composição da ictiofauna na área de influência direta da Usina Termoelétrica Candiota e compará-la a outros ambientes da região;

b) Avaliar o efeito da Usina Termoelétrica Candiota sobre a ictiofauna na sua área direta de influência através da análise da concentração de metais nos tecidos corporais de três grupos tróficos de espécies da ictiofauna presentes na região;

c) Manutenção da sistemática de acompanhamento da ictiofauna através de indicadores ambientais, utilizando o Índice de Qualidade (IQ) que reflete a integridade biótica, proposto por Xxxxxxx et al. (2000).

2.7.1 Parâmetros Monitorados e Freqüência Amostral

a) Para a composição da ictiofauna

Em relação á composição da ictiofauna, a freqüência do monitoramento será trimestral com duração de um ano. O monitoramento dessa informação visa o acompanhamento da evolução da composição, riqueza, equidade e da diversidade da assembléia de peixes nos pontos monitorados frente a variações sazonais e de graus de impacto.

b) Para a análise de metais na ictiofauna

Em relação a análise de metais na ictiofauna, a freqüência do monitoramento será trimestral, acompanhando a frequência de monitoramento dos parâmetros de comunidades.

Os parâmetros a serem monitorados são: mercúrio (Hg), zinco (Zn), chumbo (Pb), cromo (Cr), cobre (Cu), níquel (Ni) cádmio (Cd), arsênio (As) e manganês (Mn).

2.7.2 Coleta, Preservação e Manuseio das Amostras

a) Para a composição da ictiofauna: riqueza e diversidade de espécies

A fim de permitir a comparação entre os pontos de amostragem adotados para a realização do trabalho, serão utilizadas baterias de redes de espera com malhas 1,5 – 2,5 e 3,5 mm entre nós. Cada rede deve possuir dez metros de comprimento conferindo à bateria de redes 30 metros.

A fim de avaliar a presença de peixes de maior porte (como piavas, grumatãs e carpas) deve-se colocar uma rede de malha 6,0 mm entre nós com 30 metros de comprimento. Os exemplares de peixes coletados por essas redes constam de informações adicionais à riqueza de espécies.

As redes devem permanecer estendidas na água no período mínimo que compreende o entardecer do primeiro dia e o alvorecer do dia seguinte, incluindo a noite, totalizando 12 a 18 horas de esforço.

Os animais capturados serão coletados e fixados em solução de formalina 10% para posterior identificação em laboratório. Os animais coletados serão transportados sob refrigeração para serem analisados em laboratório.

b) Para a análise de metais na ictiofauna

Os animais utilizados para a análise de metais, assim que retirados das redes, serão acondicionados em sacos plásticos individualizados por ponto de amostragem e conservados em freezer ou caixa térmica com gelo e encaminhado para laboratório habilitado para a realização das análises necessárias. Em laboratório os peixes serão medidos, pesados e dissecados para a extração de porções de músculo. Os tecidos serão acondicionados em placas de Petri plásticas e submetidos à análise laboratorial.

A análise da presença e concentração de metais em tecidos corporais dos peixes deve estabelecer relação aos papéis tróficos das espécies da região. Dessa forma serão analisados peixes de três níveis tróficos distintos.

O primeiro nível trófico é o de peixes bentônicos, os cascudos, que se alimentam junto ao substrato, consumindo os organismos associados ao fundo e também o próprio sedimento. O segundo nível é o de organismos onívoros, os lambaris, que consomem tanto itens animais quanto vegetais. Esses peixes também utilizam em sua dieta tanto itens

disponíveis em toda a coluna da água quanto aqueles carregados pelo vento, chuva ou lançados pela vegetação dentro do arroio como insetos, frutos e folhas. Por fim, o terceiro nível trófico inclui os carnívoros, as traíras e tabaranas, que consomem principalmente outros peixes em sua dieta.

As seguintes espécies alvo presentes na região serão amostradas: Hoplias malabaricus e Oligosarcus robustus como exemplos de carnívoros, Astyanax sp como exemplo de onívoros, Loricariichthys anus e Hypostomus commersoni, como exemplo de bentônicos.

2.7.3 Métodos Analíticos

a) Para a composição da ictiofauna

Os resultados obtidos devem expressar a riqueza (número de espécies capturadas), número total de indivíduos da amostra e a diversidade de Shannon-Winer.

b) Para a análise de metais na ictiofauna

Para a determinação de metais, as amostras serão descongeladas, pesadas e secas em estufa a 60ºC por 24 horas e digeridas com solução ácida de HNO3, em Sistema de Preparação de Amostras por Microondas, método AOAC 999.10. A amostra digerida será filtrada, avolumada, transferida para frasco plástico e armazenada sob refrigeração até a análise (Silvano & Xxxx-Xxxxxxxxx,2003). Para a análise de metais será usada a técnica ICP-OES.

Como parâmetro de comparaçãopara as concentrações de metais analisados são utilizados os valores apontados por Xxxxx (1979), tendo

em vista que a legislação ambiental brasileira não contempla valores limítrofes para metais por peso seco de biota aquática.

2.7.4 Indicadores de Qualidade da Ictiofauna

Aos dados obtidos da composição da ictiofauna em cada ponto amostral será aplicado o Índice de Qualidade proposto por Xxxxxxx e colaboradores (2000). Este índice é composto pelo resultado do somatório de três parâmetros da comunidade de peixes analisada. Esses parâmetros são a abundância relativa, a riqueza de espécies relativa e a diversidade H’ relativa.

Para o IQ é utilizado o agrupamento do tipo somatório em que o valor resultante seráinterpretado frente aos valores de referência para as classes de qualidade do IQ estabelecidos por Xxxxxxx e colaboradores (2000), Tabela 2.7.1.

Tabela 2.7.1 Intervalos do Índice de Qualidade (IQ)

Intervalo de classe	Qualidade
<1,198	Muito baixa
1,198-1,653	Baixa
1,654-2,109	Média
>2,110	Alta

A programação para o desenvolvimento dos trabalhos encontra-se a seguir apresentada:

Atividade/Mês

2012

2013

Planejamento

Amostragem e Coleta em campo

Estudos Laboratoriais

e estatísticas

Integração dos dados e

Relatórios.

As análises serão realizadas nos Laboratórios Bioensaios e Centro de Ecologia da UFRGS.

O compartimento ambiental monitorado, ictiofauna, terá como responsável técnico o Dr. Xxxxx Xxxxxxxx Xxxxxxx.

3. Programa de Monitoramento para o Ambiente Terrestre

3.1 Rede de Monitoramento Ambiental

A localização das Estações Amostrais do Programa de Monitoramento para o Ambiente Terrestre estão apresentadas nas Tabelas 3.1.1 e 3.1.2.

Tabela 3.1.1 - Localização das Estações Amostrais da Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Terrestre

Estação Amostral

Coordenadas do Ponto

Denominação

EA 1

UTM 262163 /

6503935

Serra da Veleda (EA de referência)

EA 2

UTM 241561 /

6501179

Fazenda Três Lagoas

EA 3

UTM 240075 /

6509528

Fazenda Candiota

EA 4

UTM 248018 /

6507888

Chácara Santa Clara

EA 5

UTM 248855 /

6504129

Fazenda Santa Rita

Dado que as coordenadas acima são estimadas, para efeito da localização exata das estações amostrais em campo, será considerada uma área amostral real de até 1.000 metros de raio no entorno dessas coordenadas UTM.

A direção das cinco estações de monitoramento do ambiente terrestre em relação à Usina Termoelétrica de Candiota e o objetivo das estações estão descritos na Tabela 3.1.2.

Tabela 3.1.2 - Descrição das estações amostrais da Rede de Monitoramento para o Ambiente Terrestre

EA	Localização	Objetivo
1	Direção leste a partir da Usina	Avaliar o background da região
2	Direção sudoeste a partir da Usina	Avaliar a contribuição direta da fonte de emissão sobre o ecossistema terrestre na direção predominante do vento
3	Direção noroeste a partir da Usina	Avaliar a contribuição direta da fonte de emissão na direção predominante secundária do vento
4	Direção nordeste a partir da Usina	Avaliar o impacto sobre o ecossistema terrestre na direção nordeste
5	Direção sudeste a partir da Usina	Validar a estação de referência

Para o monitoramento ambiental dos bioindicadores da qualidade do ar através de bioindicacão vegetal, a Rede de Monitoramento para o Ambiente Terrestre será acrescida e complementada com as estações apresentadas nas Tabelas 3.1.3 e 3.1.4.

Tabela 3.1.3 - Localização das Estações Amostrais Complementares da Rede de Monitoramento Ambiental para o Biomonitoramento da Qualidade do Ar

Estação Amostral

Coordenadas do Ponto

Denominação

EA 6

UTM 242441 /

6506467

Dário Lassance

EA 7

UTM 236831 /

6500317

Assentamento São José

EA 8

UTM 244070 /

6504011

Assoc. Funcionários (AFUCAN)

EA 9

UTM 247371 /

6516939

Vila Operária

Tabela 3.1.4 - Descrição das estações amostrais Complementares da Rede de Monitoramento Ambiental para o Biomonitoramento da Qualidade do Ar

EA	Localização	Objetivo
7 e 8	Direção sudoeste a partir da Usina	Avaliar a contribuição direta da fonte de emissão sobre o ecossistema terrestre na direção predominante do vento
6	Direção noroeste a partir da Usina	Avaliar a contribuição direta da fonte de emissão na direção predominante secundária do vento
9	Direção norte a partir da Usina	Avaliar a qualidade do ar em área residencial nas proximidades da usina

A localização Rede de Monitoramento para o Ambiente Terrestre está apresentada nos Mapas 3.1.1 e 3.1.2.

Mapa 3.1.1- Distribuição das Estações Amostrais da Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Terrestre.

Mapa 3.1.2 Mapeamento das Estações Amostrais da Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Terrestre.

3.2 Plano de Monitoramento para a FLORA

O cronograma do Plano de Monitoramento Ambiental para o compartimento “Flora” está a seguir apresentado:

Mês	Descrição
JULHO / 2012	• planejamento: elaboração de cronograma de saídas de campo, preparação para 1ª saída de campo • 1ª saída de campo (previsão: 16 a 19 /07/12) • trabalho de campo • processamento dos dados de campo
AGOSTO/ 2012	• interpretação de resultados da 1ª coleta e elaboração do 1º relatório parcial trimestral
SETEMBRO / 2012	• preparação da 2ª saída de campo
OUTUBRO / 2012	• 2ª saída de campo (data prevista: 8 a 11/10/2012) • trabalho de campo • processamento dos dados de campo
NOVEMBRO / 2012	• interpretação de resultados da 2ª coleta • elaboração do 2º relatório parcial trimestral
JANEIRO / 2013	• 3ª saída de campo (data prevista: 14 a 17/01/2013) • Trabalho de campo • processamento dos dados de campo
FEVEREIRO / 2013	• interpretação de resultados da 3ª coleta
MARÇO / 2013	• elaboração do 3º relatório parcial trimestral
ABRIL / 2013	• 4ª saída de campo (data prevista: 8 a 12/04/2013) • trabalho de campo • processamento dos dados de campo
MAIO / 2013	• interpretação dos resultados da 4ª coleta • elaboração do 4º relatório parcial trimestral
JUNHO / 2013	• elaboração do relatório final integrado

O Plano de Monitoramento Ambiental para o compartimento “FLORA” atende as condições a seguir estabelecidas. Os objetivos específicos desse Plano são:

a) Examinar as composições florísticas de comunidades vegetais, visando identificar bioindicadores da qualidade ambiental.

Para atingir os objetivos propostos, o Plano de Monitoramento Ambiental para o compartimento “Flora” deve atender as condições a seguir estabelecidas, observando-se as experiências e informações disponíveis.

3.2.1 Parâmetros Monitorados, Coleta e Freqüência Amostral

a) Composição Florística das Comunidades Vegetais

Para o exame da composição florística das comunidades vegetais na área de abrangência, com o objetivo de avaliar a qualidade ambiental, serão considerados os seguintes parâmetros:

• Riqueza de espécies;

• Abundância das espécies dominantes;

• Espécies ameaçadas;

• Invasão de espécies exóticas.

As amostragens serão realizadas trimestralmente, visando determinar a composição florística, contemplar espécies de ocorrência limitada à determinadas estações do ano (espécies anuais) e examinar a possibilidade de alterações sazonais nas comunidades vegetais em geral.

A Rede de Monitoramento é composta pelas Estações Amostrais que compõem a Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Terrestre, cuja localização está apresentada na Tabela 3.1.1

Visando examinar com maior acurácia, a possibilidade de influência das emissões atmosféricas da Usina Termelétrica, sobre as comunidades vegetais campestres, sugere-se a inclusão de uma unidade amostral, localizada na direção dos ventos predominantes, a uma distância superior a dez quilômetros da UTE Presidente Xxxxxx. Esta nova unidade amostral proposta substituiria a EA 3 Fazenda Candiota (UTM 240075 / 6509528) cuja fitofisionomia difere das demais unidades amostrais, tendo em vista a colonização gradativa e constante por espécies arbustivas e lenhosas, oriundas do entorno.

3.2.2 Metodologia de Análise

a) Composições Florísticas de Comunidades Vegetais

A metodologia a ser aplicada em cada uma das cinco Estações Amostrais, terá um raio de ação de 1000 m em relação as coordenadas geográficas definidas para a suas localizações.

Tendo em vista que na região monitorada, entre as formações vegetais nativas, predominam os campos (Girardi-Deiro et al., 1992 e Girardi- Deiro, 1999), nas cinco EAs o exame deverá ser realizado exclusivamente neste tipo de comunidade vegetal. Para possibilitar a comparação, as cinco comunidades campestres deverão ter características fisionômicas similares, tanto topográficas quanto vegetacionais.

Em cada Estação Amostral, os levantamentos florísticos serão realizados em 38 (trinta e oito) parcelas de 0,25 m2, demarcadas segundo critério sistemático (dispostas ao longo de uma transecção).

A abundância das espécies dominantes será definida de acordo com a escala de Braun-Blanquet (1979), considerando as classes de 3 a 5 , de 25 a 100% de cobertura da superfície da parcela amostrada.

A classificação de espécies ameaçadas será baseada em critérios de endemismo e status de conservação, conforme a lista de espécies ameaçadas de extinção divulgada pela SEMA/RS – Rio Grande do Sul em 2003.

Nas comunidades examinadas, se houver espécies vegetais exóticas, deverá ser destacada a sua ocorrência eventual ou frequente na comunidade.

3.2.3 Indicadores de Qualidade da Comunidade Vegetal

Aos dados obtidos da composição florística em cada ponto amostral será aplicado um Índice de Similaridade. Este Índice, objetiva estabelecer comparações entre as comunidades vegetais, utilizando o emprego de Coeficientes de Similaridade entre as Estações Amostrais, baseados na presença ou ausência de espécies. Para a interpretação e análise crítica dos índices será adotado o estabelecido por Xxxxxxxxx et al., 2009.

A partir do conhecimento destes índices deverá ser identificado o grau de influência de impactos ambientais sobre a composição florística, considerando que quanto menores os valores do coeficiente de similaridade entre as comunidades, maior a influência negativa do ambiente.

A análise interpretativa dos dados de campo será realizada no Centro de Ecologia da UFRGS.

O compartimento ambiental monitorado, Flora, terá como responsáveis técnicos o Dr. Xxxxx Xxxx xx Xxxxxxxx e o MSc. Rogério Both.

3.3 Plano de Monitoramento para a FAUNA

O Plano de monitoramento para a fauna local foi elaborado considerando os grupos indicadores do meio terrestre:

1. Herpetofauna

2. Avifauna

Anfíbios e répteis, genericamente agrupados como herpetofauna, são dois grupos animais de morfologia e hábitos diversificados, especialmente em se tratando de comportamento reprodutivo do primeiro grupo (PIANKA, 1977; XXXXXXXX & TRUEB, 1994). Assim, uma variedade de métodos é utilizada com a finalidade de obter informações a respeito de sua diversidade, história de vida, estrutura e dinâmica populacional. Os anfíbios são considerados importantes grupos bioindicadores por serem sensíveis tanto a pequenas alterações nos seus hábitats quanto modificações climáticas de larga escala (e.g., aquecimento global) (XXXX & PAPP, 2000).

As técnicas de estudo da herpetofauna são similares para répteis e anfíbios, a eficácia, porém, varia para cada grupo. Ao passo que a maioria dos anfíbios do neotrópico são animais noturnos, a maioria dos répteis é diurna, ou pode ser encontrada mais freqüentemente em atividades de termorregulação, expostos à luz do sol. Sendo assim, é necessário estabelecer métodos adequados ao comportamento de cada grupo, a fim de amplificar as chances de registro do maior número de espécies possível. A definição do esforço amostral e a padronização dos métodos

aplicados em cada ponto permitem a análise comparativa dos dados obtidos.

Em razão de sua conspicuidade, adiantado conhecimento taxonômico e distribuição por diferentes ecossistemas, as aves são consideradas um excelente grupo para estudos de bioindicação. Estes estudos podem ser distinguidos em dois tipos: inventários e monitoramentos. Ambos são calcados no conhecimento da diversidade e do status das populações de aves em determinado local. O acesso à informação relativa ao tamanho das populações envolve trabalhos de campo conhecidos como censos (ou contagens, no caso de amostras de uma parcela da população). Diferentes métodos de contagem podem ser utilizados para investigar a distribuição de uma determinada espécie de ave ou para monitorar modificações populacionais, sendo aplicadas as técnicas recomendadas neste programa de monitoramento.

Os objetivos específicos desse Plano são:

a) Caracterizar a comunidade de répteis, anfíbios e aves existentes na área de influência da Usina Termelétrica de Candiota, quanto à composição, distribuição espaço-temporal, abundância e dominância das espécies;

b) Identificar espécies ameaçadas de extinção;

c) Identificar espécies de interesse econômico;

d) Analisar a variação espacial e temporal da composição e estrutura da comunidade;

e) Correlacionar os descritores das assembléias de organismos estudados (riqueza, diversidade, equidade) com as condições de qualidade do ar e do ambiente de entorno.

3.3.1 Parâmetros Monitorados, Coleta e Freqüência Amostral

Para o monitoramento dos grupos indicadores do meio terrestre (herpetofauna e avifauna) serão utilizadas as Estações Amostrais adotadas pela Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Terrestre, cujas localizações estão apresentadas na Tabela 3.1.1

A escolha das Estações de Amostragem coincidentes com aquelas adotadas pela Rede de Monitoramento dá-se pela possibilidade de utilizar as informações disponibilizadas e poder analisar os resultados obtidos investigando a existência de correlações entre a qualidade do ar influenciada pela fonte emissora e os elementos da fauna terrestre monitorados nessas Estações.

As campanhas de amostragem terão periodicidade trimestral e a execução será coincidente com o período de amostragem dos outros indicadores ambientais do compartimento terrestre.

O cronograma do Plano de Monitoramento Ambiental para o compartimento “Fauna” está a seguir apresentado:

Mês	Descrição
JULHO / 2012	• planejamento: elaboração de cronograma de saídas de campo, preparação para 1ª saída de campo • 1ª saída de campo • trabalho de campo • processamento dos dados de campo
AGOSTO/ 2012	• interpretação de resultados da 1ª coleta
SETEMBRO / 2012	• elaboração do 1º relatório parcial trimestral
OUTUBRO / 2012	• 2ª saída de campo (data prevista • trabalho de campo • processamento dos dados de campo
NOVEMBRO / 2012	• interpretação de resultados da 2ª coleta • elaboração do 2º relatório parcial trimestral
JANEIRO / 2013	• 3ª saída de campo • Trabalho de campo • processamento dos dados de campo
FEVEREIRO / 2013	• interpretação de resultados da 3ª coleta
MARÇO / 2013	• elaboração do 3º relatório parcial trimestral
ABRIL / 2013	• 4ª saída de campo • trabalho de campo • processamento dos dados de campo
MAIO / 2013	• interpretação dos resultados da 4ª coleta • elaboração do 4º relatório parcial trimestral
JUNHO / 2013	• elaboração do relatório final integrado

3.3.2 Metodologias de Análise

3.3.2.1 Herpetofauna

Para a avaliação quali-quantitativa dos grupos serão empregadas as seguintes técnicas de amostragem.

a) Técnica de Quadrats

Esta técnica é largamente usada para estudar anfíbios e répteis que vivem dispersos por uma grande área ou que passam a maior parte do tempo ocultos em seus respectivos microhábitats. É especialmente indicado como método para avaliar a abundância relativa de habitantes da serrapilheira, em florestas.

Será considerada uma medida padrão de cada quadrado amostral (“quadrat”) de 10 m x 10 m, sendo que o número de quadrats depende do tamanho da área e dos objetivos do estudo. A fim de viabilizar a amostragem e de possibilitar a existência de réplicas em cada Estação de Amostragem serão usados quadrats de 3 m x 3 m com o emprego de 5 réplicas em cada estação.

Dentro dos quadrados, a busca pelos animais é realizada manualmente através da remoção da serrapilheira e do deslocamento de galhos, troncos, pedras ou investigação de bromélias. Para a demarcação da área dos quadrados, recomenda-se o cercamento com telas de modo a evitar a fuga para fora do quadrado de lagartos e cobras de rápidos movimentos. Uma das restrições do método é o seu grande esforço requerido e recomenda-se que no mínimo dois técnicos se ocupem do trabalho. Outra importante restrição é a alteração significativa que os amostradores efetuam no hábitat. Porém, uma das vantagens do método é que ele provê uma estimativa confiável da densidade das espécies amostradas. Da mesma forma, se executado concomitantemente com medidas de hábitat, pode relacionar a abundância diferencial com particularidades do hábitat.

b) Técnica de Transecções

As transecções serão efetuadas por meio de caminhadas aleatórias nos ambientes de ocorrência das espécies de anfíbios e répteis. Nestas caminhadas, feitas a uma velocidade baixa e regular, o amostrador busca ativamente indivíduos em todos os microhábitats favoráveis (e.g., superfície inferior de pedras, folhas e troncos caídos; entre a serrapilheira; interior de bromélias). Este método é valioso na coleta de dados referentes à riqueza, mas pode ser pouco efetivo quanto à estimativa de parâmetros populacionais.

A visualização direta é mais provável para os répteis, em virtude de seus hábitos termorreguladores. Para certas espécies de lagartos e cobras, este método consiste na maneira mais eficaz de avaliar sua abundância relativa (TURNER, 1977). Para tanto, é necessário que a amostragem seja realizada entre o início e o meio da manhã, quando os animais se expõem mais e sua detectabilidade aumenta. A captura pode ocorrer à mão livre ou, no caso de serpentes peçonhentas e lagartos de grande porte, com o auxílio de laços ou ganchos. Medidas de densidade podem ser obtidas caso o transecto tenha um tamanho definido, por ex. de 500 m x 50 m.

c) Técnica de Contagem em Sítios de Reprodução

Este método consiste na contagem periódica e sistemática de anuros adultos nos locais onde os mesmos se congregam para reprodução e envolve a experiência do pesquisador em reconhecer as vocalizações das diferentes espécies de anfíbios da área estudada. XXXXX e XXXXXXXX (1994) citam algumas complicações do método de contagem de anfíbios

em sítios de reprodução. A maior delas é a variabilidade da atividade reprodutiva nas populações de anfíbios entre anos distintos. Uma determinada área úmida, por exemplo, pode não ser utilizada todos os anos por determinadas espécies (WHITACRE, 1997). Isto implica em dificuldades na interpretação quando em estudos de monitoramento. Aparentemente, tais flutuações podem ser comuns mesmo em populações consideradas saudáveis (XXXXXXXX et al., 1991; XXXXX, 2001).

O trabalho deve iniciar com a identificação e mapeamento das áreas úmidas utilizadas como sítios de reprodução dos anfíbios. Idealmente, obter-se-a réplicas de cada tipo de área úmida, organizando-as em grupos semelhantes quanto ao tamanho da área, tipo de hábitat circundante e estrutura do hábitat na própria área úmida. Cada área será amostrada repetidamente em intervalos distintos da noite, de modo a detectar padrões de detectabilidade de cada espécie em diferentes períodos noturnos (CARDOSO & XXXXXXX, 1987). Tal amostragem ocorrerá em pelo menos três noites completas em cada área úmida selecionada.

A abundância relativa de cada espécie será avaliada utilizando um índice de intensidade, (ÁVILA & FERREIRA, 2004), onde:

• (0) nenhum indivíduo da espécie vocalizando;

• (1) vocalizações esparsas, sem sobreposição e número de indivíduos estimável entre um e dez;

• (2) vocalizações se sobrepõem, mas ainda é possível individualizá-las e estimar o número de indivíduos (11-35 indivíduos);

• (3) formação de coro em que as vocalizações individuais são indistinguíveis e não se pode estimar o número de indivíduos (> 35).

3.3.2.2 Avifauna

Para a avaliação quali-quantitativa dos grupos serão empregadas as seguintes técnicas de amostragem.

a) Técnica dos Pontos de Escuta

O método dos pontos de contagem (ou pontos de escuta, sensu XXXXX et al., 1993) é considerado o mais indicado para contagens de avifauna em ambientes florestais nos trópicos (VIELLIARD, 2000). Serão utilizados pontos de contagem de abrangência limitada pela acuidade auditiva do amostrador, distantes 200 metros entre si, de forma a evitar contagens duplas do mesmo indivíduo (BLONDEL et al., 1981). Não serão utilizados pontos de raio fixo, em virtude da dificuldade de obter estimativas visuais confiáveis de distância em florestas densas (ALEIXO, 1999).

As contagens nos pontos devem iniciar nos primeiros minutos da manhã e se estenderem até três horas após o nascer do sol. O número de pontos a serem realizados em cada área de amostragem será o mesmo das etapas anteriores de monitoramento. Toda ave vista ou ouvida durante quinze minutos de amostragem em cada ponto será considerada um contato (XXXXX, 1981; XXXXX et al., 1995; XXXXXX & XXXXXXXXX, 1995).

A abundância relativa será obtida através da divisão do número de contatos de uma determinada espécie pelo número total de pontos amostrados. O resultado obtido será expresso como um Índice Xxxxxxx xx Xxxxxxxxxx (XXX) (XXXXXXXXX, 0000; ANJOS, 2001), que poderá ser

comparado entre pontos de amostragem e entre as diferentes amostragens em um mesmo ponto.

b) Técnica de Transecções

O método das transecções assegura que um maior número de indivíduos seja detectado em campos, uma vez que não há a restrição de área para assegurar independência, como entre os pontos (ROTELLA et al., 1999). Além disso, o observador pode ficar mais atento às aves do que propriamente aos obstáculos da transecção, o que não ocorre em ambientes florestais (WUNDERLE, 1994). Assim, os hábitats campestres serão preferencialmente amostrados por meio de transecções não-lineares e sem tamanho definido.

A contagem das aves nas transecções será efetuada através de caminhadas lentas pelos distintos hábitats de áreas abertas (incluindo campo seco, campo úmido, pastagens e cultivos). Será utilizado como unidade amostral cada intervalo de meia hora de contagem.

A abundância relativa de cada espécie será obtida dividindo-se o número de contatos pelo número total de unidades amostrais. A amostragem nos hábitats campestres será efetuada durante as primeiras horas da manhã, logo após o nascer do sol.

OBSERVAÇÕES:

1) Em ambos os métodos aqueles indivíduos contactados em pares, em grupos familiares ou em bandos serão considerados como um único contato, independente do número real de indivíduos presentes. Desta forma, evita-se que espécies mais conspícuas em razão do hábito gregário tenham seu tamanho populacional superestimado em relação à quantidade de amostras obtidas (VIELLIARD, 2000).

2) Não serão efetuadas contagens em dias de chuva ou com ventos fortes.

3) Os nomes científicos e a sequência taxonômica das espécies de aves deverão seguir CBRO (2011). Os nomes populares das espécies de aves seguirão XXXXXX (2001).

3.3.3 Indicadores de Qualidade da Fauna

Aos dados obtidos da composição, distribuição espaço-temporal, abundância e dominância das espécies em cada ponto amostral serão calculados os seguintes Índices Bióticos:

• Riqueza;

• Índice de Diversidade;

• Índice de Equidade;

• Índice de Intensidade (anfíbios);

• Índice Pontual de Abundância (avifauna).

Estes Índices objetivam estabelecer comparações entre as assembléias de organismos estudados em cada Estação Amostral e correlações com as condições de impacto atmosférico e com o ambiente de entorno.

A análise interpretativa dos dados de campo será realizada no Centro de Ecologia da UFRGS.

O compartimento ambiental monitorado, fauna, terá a coordenação da Dra. Xxxxxx Xxxxx Xxxxx e responsabilidade técnica do MSc. Xxxxx Xxxxxxxx Xxxxx para a Herpetofauna e do MSc. Xxx Xxxxx Xxxxx Xxxxxx Junior para a Avifauna.

3.4 Plano de Monitoramento para os BIOINDICADORES DA QUALIDADE DO AR

O Plano de Monitoramento Ambiental para o compartimento “Qualidade do Ar” prevê a execução do seguinte cronograma:

Mês

Descrição

JULHO / 2012

• planejamento: elaboração de cronograma de saídas de campo, preparação para 1ª saída de campo

• 1ª saída de campo (realizada em 9 e 10/07/12)

• coleta das amostras do monitoramento passivo

• processamento das amostras e envio das amostras para o laboratório credenciado

AGOSTO/ 2012

• coleta dos bioindicadores ativos (liquens) em local isento de contaminação ambiental

• confecção de novos suportes para exposição dos bioindicadores ativos

• saída extra para instalação dos bioindicadores ativos nas estações de amostragem (previsão: 20 e 21/08/12)

• coleta de solo e de líquens das estações de amostragem

• processamento das amostras de solo e liquens; envio para o laboratório

• análises das amostras do monitoramento passivo coletadas no mês anterior

• interpretação de resultados da 1ª coleta

SETEMBRO /

2012

• elaboração do 1º relatório parcial trimestral

OUTUBRO / 2012

• análise e interpretação de resultados das amostras de solo e de liquens coletadas em agosto/2012

• 2ª saída de campo (previsão: 8 e 9/10/2012)

• coleta de amostras do monitoramentos passivo

• processamento das amostras e envio para o laboratório

• análises das amostras

NOVEMBRO / 2012

• interpretação de resultados da 2ª coleta

• elaboração do 2º relatório parcial trimestral

JANEIRO / 2013

• 3ª saída de campo (previsão: 7 e 8/01/2013)

	• coleta de amostras do monitoramentos passivo • processamento das amostras e envio para o laboratório
FEVEREIRO / 2013	• análises das amostras • interpretação de resultados da 3ª coleta
MARÇO / 2013	• elaboração do 3º relatório parcial trimestral
ABRIL / 2013	• 4ª saída de campo (previsão: 4 e 5/03/2013) • coleta de amostras dos monitoramentos passivo e ativo • processamento das amostras e envio para o laboratório • análises das amostras
MAIO / 2013	• interpretação dos resultados da 4ª coleta • elaboração do 4º relatório parcial trimestral
JUNHO / 2013	• elaboração do relatório final integrado

Os objetivos específicos desse Plano são:

a) Desenvolver na área de influência direta da Usina, em estações representativas para monitoramento da qualidade do ar, programas de biomonitoramento ativo e passivo para avaliar o efeito das emissões sobre os vegetais bioindicadores;

b) Avaliar os impactos na qualidade do ar, gerados pelas atividades da Usina Termoelétrica de Candiota, através do uso de abordagem integradora das respostas dos diferentes programas de biomonitoramento desenvolvidos.

Parâmetros monitorados, coleta e frequência amostral

Para o biomonitoramento da qualidade do ar serão amostrados

bioindicadores nas cinco estações amostrais adotadas pela Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Terrestre, acrescidas das

quatro estações já estabelecidas na primeira etapa (ciclo 2011/2012) e de uma nova estação de amostragem localizada além dos 10 km à jusante da usina na direção predominante do vento.

A localização e direção das nove estações de monitoramento em relação à Usina Termoelétrica de Candiota e suas justificativas estão descritos nas Tabelas 3.1.1 a 3.1.4. A nova estação de amostragem terá suas coordenadas geográficas determinadas na próxima saída para o campo. Para efeito da localização exata das estações amostrais em campo, será considerada uma área amostral real de até 1.000 metros de raio no entorno da coordenada UTM estabelecidas.

As campanhas de amostragem terão periodicidade trimestral conforme o cronograma acima, de forma a coletar dados em todas as estações do ano.

Biomonitoramento Passivo

O biomonitoramento passivo será constituído na coleta trimestral, em cada uma dos períodos estacionais do ano, das três espécies vegetais já utilizadas nos biomonitoramentos anteriores (Divan Junior et al. 2009; Divan Junior et al. 2010) nas dez estações de amostragem.

As espécies a serem amostradas serão:

Elephantopus mollis Kunth (Asteraceae)

Baccharis trimera (Less.) D.C. (xxxxxxxx, Asteraceae)

Paspalum notatum Flueggé (grama forquilha, Poaceae)

Em cada estação de amostragem será coletada uma amostra representativa de cada espécie, constituída por no mínimo 18 unidades amostrais (por unidade amostral entenda-se folhas, ramos ou plantas, conforme a espécie), as quais serão reunidas para formar uma amostra composta. Em adição a amostragem dos bioindicadores vegetais, serão amostrados também espécimes do líquen Ramalina celastri nas dez estações de amostragem, nos quais serão avaliados os teores de metais (Cd, Pb e Zn), enxofre, bem como o teor de clorofila (Xxxxxxx et al., 1977) e a peroxidação de lipídios de membrana (Caregnato et al., 2010).

As amostras de P. notatum serão subdivididas em duas sub-amostras por local de coleta, as quais em laboratório, uma será lavada e a outra não.

Além da amostragem das espécies vegetais e de liquens, serão também coletadas amostras de solo para sua caracterização química em todas as estações de amostragem.

O procedimento para amostragem do solo será constituído na coleta de um mínimo de 25 unidades amostrais de cada estação amostral, as quais serão reunidas em uma amostra composta (totalizando cerca de 1 kg de solo) por estação de amostragem. Será coletado o solo superficial, de 0 a 20 cm de profundidade, com o auxílio de uma pá ou utensílio similar de material plástico e armazenado em sacos plásticos identificados.

Metodologia do Biomonitoramento Passivo

As amostras de X. mollis, B. trimera e uma sub-amostra de P. notatum serão lavadas água corrente e por 10 minutos em ultrassom para retirada do solo e do material particulado depositados sobre as folhas. Todas as amostras de bioindicadores vegetais coletadas serão secas em estufa a 60ºC por 48 horas, moidas e identificadas para envio ao laboratório credenciado para a análise dos teores de cádmio, chumbo, zinco e enxofre por ICP-OES (Espectrofotometria de Emissão Óptica em Plasma Induzido) e fluoreto por eletrodo íon-seletivo, conforme já descrito na primeira etapa.

As amostras de P. notatum (lavada e não lavada) serão consideradas como amostras independentes para efeito das análises dos teores de metais totais (Cd, Pb e Zn) e fluoreto. Quanto ao teor de enxofre, a análise será realizada apenas nas amostras lavadas.

Biomonitoramento Ativo

O biomonitoramento ativo se constituirá na exposição, em condições padronizadas, de duas espécies de liquens, por um período único de aproximadamente onze meses nas dez nove estações de amostragem

Para este fim serão utilizadas as mesmas espécies já empregadas na primeira etapa, a saber:

Ramalina celastri (Spreng.) Krog et Swinsc.;

Teloschistes exillis (Michx.) Vain.

A escolha do local de procedência dos liquens deve garantir que o material coletado não tenha sido exposto a nenhum tipo de contaminação prévia.

O procedimento de exposição consistirá da coleta na natureza de ramos ou porções da casca contendo os indivíduos das espécies selecionadas e a sua fixação em um suporte padronizado.

Após a coleta dos liquens, os mesmos serão fixados a suportes e transplantados para as estações de amostragem de modo que fiquem a uma altura de 1,5 metros da superfície em área aberta e distante de obstáculos à livre circulação do vento.

Metodologia do Biomonitoramento Ativo

As espécies liquênicas coletadas após o período de exposição serão lavadas em ultrassom conforme descrito acima e secas em estufa a 60ºC por 48 horas, após o que serão enviadas para o laboratório credenciado para a análise dos teores de metais (Cd, Pb e Zn) e enxofre pelo mesmo método já descrito.

Indicadores de Qualidade

Serão desenvolvidos indicadores que avaliem os impactos na qualidade do ar gerados pelas atividades da Usina Termoelétrica de Candiota, através do uso de abordagem integradora das respostas dos diferentes programas de biomonitoramento desenvolvidos, sempre levando em conta a comparação com a estação de referência, considerada “ponto branco”.

Análise Estatística

Os resultados serão submetidos a tratamento estatístico de análise multivariada, através de técnicas de agrupamento e de ordenação, conforme proposto por Xxxxxxxx (2000) com o emprego do software MULTIV (Pillar, 2001; Pillar 2004).

O compartimento ambiental monitorado, Biondicadores da qualidade do ar, terá como responsável técnico o Dr. Xxxxxxx Xxxxxx Xxxxx Junior.

3.5 Plano de Monitoramento para a ATIVIDADE PECUÁRIA (BOVINOS E OVINOS)

Este Plano de Monitoramento visa avaliar o impacto sobre a atividade agropecuária com ênfase sobre o rebanho bovino e ovino, na área na área de influência da Usina Termelétrica de Candiota.

3.5.1 Parâmetros Monitorados, Coleta e Freqüência Amostral

Para o monitoramento dos rebanhos bovino e ovino, solo e estrato vegetal (pastagem) serão utilizadas as Estações Amostrais adotadas pela Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Terrestre, cuja localização está apresentada na Tabela 3.1.1, as quais serão complementadas se necessário para atendimento da amostragem.

Em relação ao acompanhamento da atividade pecuária, a freqüência do monitoramento será semestral (inverno e verão) para o rebanho de bovinos e ovinos e com freqüência trimestral para o monitoramento do estrato vegetal e do solo.

O cronograma do Plano de Monitoramento Ambiental para o compartimento “Atividade Pecuária” está a seguir apresentado:

Atividade

2012

2013

Planejamento

Amostragem: Bovinos Ovinos Pastagem

Solo

x x

x x x

x x

Análise: Laboratório Dados de

campo

Estatística

x x

Relatório

3.5.2 Material e Métodos

Para o monitoramento dos rebanhos bovino e ovino, solo e estrato vegetal (pastagem) serão utilizadas amostras de 05 Estações Amostrais, adotadas pela Rede de Monitoramento Ambiental para o Ambiente Terrestre.

a) Rebanho bovino e ovino

O número de indivíduos amostrado em cada Estação Amostral será de 50 indivíduos (30 bovinos e 20 ovinos), salvo caso onde a estação amostral, comprovadamente, não possua rebanho suficiente para composição da amostra.

Os bovinos terão sido criados na estação amostral há, no mínimo, dois anos e os ovinos serão adultos e terão passado a fase de crescimento na

estação amostral. Além desse requisito, a idade dos animais amostrados será representativa do rebanho existente em cada estação amostrada.

Na estação de referência (EA 1), a amostragem abrangerá bovinos e ovinos (30 e 20 indivíduos, respectivamente) criados fora da área de influência da fonte emissora, bem como de qualquer outra fonte que possa confundir os resultados da amostragem. Estes animais terão as seguintes características: serem criados no local; ter idade conhecida ou estimada pela dentição; ter dieta semelhante à dos animais da área a ser monitorada (pastagem nativa na mesma região fitofisionômica).

Os animais serão encaminhados ao brete onde serão avaliados quanto ao desgaste e lesões nos incisivos permanentes, bem como nos tecidos adjacentes (Xxxxx-Xxxxxx et al., 1996; Xxxxx et al., 2000; Xxxxxxx et al., 2005) e quanto à dificuldade de locomoção.

As observações serão anotadas em planilha, com identificação da unidade produtiva e do indivíduo, assim como terão os dentes incisivos fotografados visando possibilitar a identificação e distinção das alterações dentárias.

Posteriormente, os registros fotográficos serão analisados para determinação do índice de mosqueamento, segundo Xxxxx-Xxxxxx et al. (1983).

b) Estrato vegetal (pastagem)

Em cada estação amostral será coletada uma amostra composta, constituída por 18 unidades amostrais representativa da pastagem natural da área de estudo.

As amostras serão coletadas com o auxílio de instrumentos apropriados e serão armazenadas em bolsas plásticas identificadas e mantidas sob- refrigeração até o processamento em laboratório.

c) Solo

Em cada estação será coletada uma amostra composta de cerca de 500 g, constituída de um mínimo de 25 unidades. Será coletado o solo superficial, de 0 a 20 cm de profundidade, com o auxílio de instrumento apropriado e armazenada em sacos plásticos identificados.

As amostras de pastagem e solo coletadas serão encaminhadas, para determinação de fluoreto e sílica, ao laboratório Bioensaios.

d) Indicadores de Qualidade

Serão utilizados o índice de mosqueamento e a ocorrência de desgaste excessivo de dentes em bovinos e ovinos, bem como a determinação de sílica e flúor nos extratos solo e vegetal como comparativo entre as Estações Amostrais.

Serão estabelecidos Índices de Similaridade através de técnicas estatísticas entre os registros de intensidade de alterações no rebanho bovino e dos teores de fluoreto e sílica no estrato vegetal e no solo. Serão feitas correlações entre estes índices e as condições do ambiente de entorno de cada Estação Amostral. Os resultados serão submetidos a tratamento estatístico de análise multivariada, através de técnicas de agrupamento e de ordenação.

O compartimento ambiental monitorado “Atividade Pecuária” terá como responsável técnica a Dra. Xxxxxxxx Xxxxxxx, Médica Veterinária.

BIBLIOGRAFIA CONSULTADA

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ANOTAÇÕES DE RESPONSABILIDADE TÉCNICA

A seguir estão apresentadas as Anotações de Responsabilidade Técnica dos profissionais que executarão as atividades deste Monitoramento de Bioindicadores Ambientais

DOCUMENTAÇÃO DOS LABORATÓRIOS EXECUTORES DOS ENSAIOS LABORATORIAIS

• BIOENSAIOS

• ECOTOX

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Table of Contents

USINA TERMELÉTRICA PRESIDENTE MÉDICI MUNICÍPIO DE CANDIOTA/RS

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