Métodos Analíticos. As análises qualitativas foram realizadas com exame sob microscópio ótico, binocular CETI, sob aumento de até 400 vezes. Espécimens foram dissecados em glicerina com agulhas de dissecção, sob microscópio estereoscópico Hund Wetzlar modelo H500, com aumento de até 60 vezes. Na identificação taxonômica das espécies zooplanctônicas forão utilizadas as chaves de identificação, diagnoses e descrições dos seguintes autores: RUTTNER-KOLISKO (1974), KOSTE (1978), XXXX (1984), XXXXX & XXXXXX (1986) e XXXXXX-XXXXXXXX (1997). As análises quantitativas foram realizadas através de contagens numéricas ao microscópio estereoscópico. Para as contagens de indivíduos pertencentes aos grupos de Cladocera e Copepoda (copepoditos e adultos), utilizou-se uma câmara de contagem de Bogorov. Para as contagens de Rotifera e náuplios de Copepoda utilizou-se uma câmara de Sedgewick- Rafter em microscópio óptico. Os valores obtidos para densidade absoluta de organismos são expressos em numero de indivíduos por metro cúbico (Nº. ind/m3). A definição da constância de ocorrência das espécies nas amostras foi baseada nas porcentagens sugeridas por DAJOZ (1973): 0 a 25% - ocasionais; >25 a 50% - espécies acessórias e >50% - espécies constantes. A diversidade biológica foi calculada utilizando-se o índice de SHANNON- WINNER, através da fórmula: S ni ni H = - ∑ --- x ln , i=1 N N Onde: S = número de espécies; ni = número de indivíduos em cada espécie; N = número total de indivíduos. A riqueza considerada é o número de espécies e a eqüitatividade ou uniformidade, se refere à distribuição dos organismos nos taxons. A eqüitatividade foi calculada através da equação: H E = -------, onde: Hmax H = é a diversidade de espécies obtida pelo índice de SHANNON-WINNER, e Hmáx é a diversidade de espécies sob condições de máxima equitatividade, obtida do logaritmo do número de espécies da amostra.
Métodos Analíticos. Em laboratório, as amostras biológicas, foram novamente lavadas em peneira, com malha de nylon de 0,210mm de abertura. O material foi processado sob microscópio estereoscópico e os organismos retirados, contados, identificados e conservados em vidros com álcool 70%. Para os representantes de Chironomidae e Oligochaeta, foram confeccionadas lâminas semi-permanentes, e os organismos identificados em microscópio. Para a identificação foram utilizadas as chaves de XXXXXXXX (2004), XXXXXXXXXXX & MARCHESE (1989), EPLER (1985), TRIVINHO-STRIXINO & XXXXXXXX (1995). Para a análise dos resultados, foram calculados os seguintes parâmetros biológicos: densidade de organismos (ind/m2), abundância/dominância dos táxons. Considerou-se também a riqueza de famílias (número de famílias que ocorreram em cada estação). O Índice IBMWP, que considera a tolerância e sensibilidade dos organismos (adaptação de XXXX-XXXXXXXX & XXXXXXX-XXXXXX, 1988), foi calculado considerando a presença/ausência dos organismos em cada estação amostral. Para a análise dos resultados, considerou-se a ausência ou presença de famílias, conforme a sua tolerância ou sensibilidade, riqueza (número de famílias em cada estação amostral), abundância e dominância dos táxons. O Índice de Diversidade (Xxxxxxx-Xxxxxx, log base e) e de Equitatividade (J’ de Pielou), assim como os Indicadores de Qualidade serão apresentados no próximo relatório.
Métodos Analíticos. 1 — As análises a realizar para a aplicação do presente Regulamento são as que constam da Autorização de Descarga ou da Autorização Provisória de Descarga.
Métodos Analíticos. As amostras de bioindicadores vegetais e uma sub-amostra de P. notatum foram lavadas em ultrassom. Todas as amostras de bioindicadores vegetais coletadas foram pesadas e secas em estufa a 60ºC por 24 horas. Ambas as amostras de P. notatum (lavada e não lavada) foram consideradas como amostras independentes para efeito das análises dos teores de metais totais (Cd, Pb e Zn). Quanto ao teor de enxofre, a análise foi realizada apenas nas amostras lavadas. A determinação de metais e enxofre nas amostras secas e digeridas com solução ácida de HNO3 foi realizada pela técnica espectrométrica de Plasma Induzido– ICP/OES. Os Relatórios de Ensaio referentes a estes ensaios estão apresentados em anexo.
Métodos Analíticos. As metodologias analíticas que serão seguidas para as análises químicas, físicas e biológicas propostas nas amostras de água superficial estão descritas na Tabela 2.2.3. Tabela 2.2.3 – Metodologias analíticas empregadas nos ensaios de Água Superficial PARÂMETRO METODOLOGIA REFERÊNCIA Condutividade Condutometria Standard Methods 21th 9711 B Coliformes termotolerantes (E. coli) Substrato enzimatico Standard Methods 21th 9223 B Cor Espectrofotometria Standard Methods 21th 2120 C Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO) Método de Winkler Standard Methods 21th 5210 B Fenóis totais Absorciometria com clorofórmio EPA 9065 Fósforo Total Absorciometria com redução do ácido ascórbico Standard Methods 21th 4500 P E Nitrato Cromatografia iônica Standard Methods 21th 4110 B Nitrogênio Amoniacal Nesslerização Standard Methods 21th 4500-C ou EPA 350.2 Metais dissolvidos: Al, Fe, Cu ICP-OES Standard Methods 21th 3030/3120 B Metais totais: As, Cd, Pb, Cr, Mn, Ni, Zn ICP-OES Standard Methods 21th 3030/3120 B Metais totais: Hg CV-AA Standard Methods 21th 3112B Óleos e Graxas Gravimetria -extração com soxhlet Standard Methods 21th 5520 Oxigênio Dissolvido Método Potenciométrico- Oxímetro NBR 9898/87 pH Método Potenciométrico- pHmetro NBR 14339 / 1999 ou Standard Methods 21th 9711 B Sólidos Dissolvidos Totais Gravimetria- secagem à 180°C Standard Methods 21th 2540 C Surfactantes Absorciometria com azul de metileno Standard Methods 21th 5540 C Sulfeto Iodometria Standard Methods 21th Temperatura Termometria NBR 9898/87 Tox. crônica com S.capricornutum Ensaios Ecotoxicológicos NBR ABNT 12648/2005 Tox. crônica com Ceriodaphnia dubia Ensaios Ecotoxicológicos NBR ABNT 13373/2005 Tox. crônica com Pimephales promelas Ensaios Ecotoxicológicos NBR ABNT 15499/2007 Turbidez Nefelometria Standard Methods 21th 2130 B